| Gene News |
基因快讯2002年第3期 |
线粒体DNA基因表达的缺乏导致体内细胞凋亡的升高
Jianming Wang*, José P. Silva*, Claes M. Gustafsson , Pierre Rustin , and Nils-Göran Larsson*,§
* Department of Molecular Medicine, Karolinska Institutet, L8: 02, Karolinska Hospital, S-171 76 Stockholm, Sweden; Department of Medical Nutrition, Karolinska Institutet, Novum, S-141 86 Huddinge, Sweden; and Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U393,
Hôpital des Enfants-Malades, Paris 75015, France
Communicated by Rolf Luft, Karolinska Hospital, Stockholm, Sweden, January 24, 2001
(received for review December 4, 2000)
(续前)
|
结果 Western blot 的检测发现在无血清或STP-处理的鼠胚胎纤维原细胞中有加工后的caspase3和蛋白激酶 的异构体存在,但在Tfam敲除的心肌中没有(图 3C)。来自Tfam敲除的心肌中的RNA的Northern blots 结果也显示了编码proapoptotic Bax和anti-apoptotic Bcl-x(L)蛋白转录水平的提高(图1A,B),这表明调节凋亡的基因表达的提高。上述发现均说明Tfam敲除的心肌中凋亡水平升高,但没有表明激活的途径。
图1. Tfam 敲除的小鼠心肌(TfamloxP/TfamloxP, +/Ckmm-cre)和同窝出生对照小鼠(TfamloxP/TfamloxP)心肌中基因表达和酶活性轮廓图。
(B) Tfam 缺失心肌(n = 4)和对照心肌(n = 4)中基因转录水平的PhosphorImager分析结果。*, P < 0.05; **, P < 0.01; ***, P < 0.001.
(C) Tfam 缺失心肌(n = 8)和对照心肌(n = 8)中complex II (CII)、complex IV (CIV)、顺乌头酸(Aco)、总谷胱甘肽过氧化物酶(Gpx)和总超氧化物歧化酶(Sod)活性的生物化学检测。*, P < 0.05; ***, P < 0.001.
Tfam敲除的心肌活性氧簇的过表达通过超氧化歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶的上调进行补偿。
图2. Tfam 敲除的小鼠心肌(TfamloxP/TfamloxP, +/Ckmm-cre)和同窝出生对照小鼠(TfamloxP/TfamloxP)心肌组织学染色图。
图3. Tfam 敲除的小鼠心肌(TfamloxP/TfamloxP, +/Ckmm-cre)显示凋亡水平升高。 (A) DNA ladders在Tfam 敲除心肌中存在 (heart, L/L, cre) 但在对照片 (L/L)中却没有。无血清和STP 处理的鼠胚胎纤维原细胞(MEF)作为阳性对照,未经处理的MEF 作为阴性对照
(B) Tfam 敲除的小鼠心肌(n = 15) 和对照心肌(n = 15) TUNEL 染色的Wilcoxon 配对检测结果表明在Tfam 敲除的小鼠心肌中TUNEL 阳性细胞有明显的增加 (***, P < 0.001)。
(C)前切后caspase 3 和剪切后蛋白酶C 异构体 (PKC ) 的检测分析。在Tfam 敲除的小鼠心肌(L/L, cre)和对照心肌(L/L)中没有检测到剪切后caspase 3 和剪切后蛋白酶C 异构体无血清和STP 处理的鼠胚胎纤维原细胞(MEF)作为阳性对照,未经处理的MEF 作为阴性对照
在E9.5 Tfam
敲除的纯合胚系中显示了大规模的凋亡。
上述结果表明在缺乏mtDNA 、呼吸链功能低下的细胞中发生了大量的凋亡。 |
图4. Tfam敲除 胚胎(Tfam / )在E9.5出现大量的凋亡。针对COX活性的酶组化染色结果显示在 Tfam敲除胚胎中没有COX活性(A) 但在对照胚胎中COX活性正常 (B)。琥珀酸脱氢酶活性的酶组化染色结果显示在Tfam敲除胚胎(C)和对照胚胎(D)中活性正常。TUNEL染色结果显示在Tfam敲除胚胎(E)中存在大量的TUNEL阳性细胞(箭头所示)而在对照胚胎中很少(F)。免疫组化染色在Tfam敲除胚胎(G)中检测到大量的caspase 3(箭头所示)而在对照胚胎(H)中只有偶尔的阳性细胞。免疫组化染色在Tfam敲除胚胎(I)中和对照胚胎(J)中都没有检测到caspase 7
图5.
(A) 通过annexin V 和propidium iodide 的染色,从早期凋亡或坏死细胞(annexin positive, propidium iodide positive)中分选早期凋亡细胞(annexin positive, propidium iodide negative)
(B)通过annexin V/propidium iodide染色得到的流式检测的早期凋亡细胞比例值与
(C) Caspase 3 在
(D) 讨论 在这篇论文里我们证实了鼠胚胎和鼠心肌中呼吸链功能低下引起的细胞程序性死亡。在两种样本中我们都发现了预示凋亡程序激活的TUNEL 阳性细胞的显著升高。随后,我们通过DNA片断的凝胶电泳证实了Tfam敲除心肌中发生的凋亡。我们在Tfam 敲除鼠胚胎中检测到了活性caspase 3,也在Tfam敲除心肌中检测到了活性caspase 3和caspase 7。Tfam 敲除鼠胚胎中呼吸链功能低下引起的主要突变显型(12)在E8.5没有引起凋亡的升高,在E9.5出现出现大规模的凋亡,在E10.5出现了胚胎的吸收。我们的研究显示缺乏mtDNA的胚胎或是分化细胞在体内都会经历凋亡。因此,对于患有mtDNA 突变疾病的患者,凋亡会是病因的一个重要因素。然而,人组织研究材料的缺乏阻碍了这种现象的进一步研究,目前仅有一篇关于人mtDNA 突变疾病使凋亡升高的报道(24)。 ROS 通常被认为能有效地触发凋亡(25)。我们在Tfam敲除的心肌中发现了Gpx 和 Sod2转录水平的升高和Gpx 酶活性的升高。然而线粒体顺乌头酶和核编码的呼吸链复合体II ,一种活性能被ROS抑制的铁-硫酶,具有正常的活性。这暗示了一种抗氧化防御的诱导消除了ROS的产生。此外,我们没有检测到p53 的表达,据报道这是在氧压下诱导产生的(20)。ROS在呼吸链功能低下的细胞中的重要性还有许多细节需要研究,也需要在心肌以外的不同组织中开展研究。 细胞死亡程序,凋亡或坏死,依赖于细胞内ATP水平(29)。ATP的缺乏阻断了核的浓缩和STP或Fas诱导产生的T细胞凋亡最后阶段的DNA片段(29)。在Tfam 缺失心肌中我们没有检测到预示坏死的炎症标志或炎症后标志。这结果说明心肌在经历调亡的过程中有足够的ATP供应,尽管氧化磷酸化作用被削弱,我们发现3-磷酸甘油醛脱氢酶转录水平的升高引起了糖酵解作用的补偿性上调。这说明呼吸链功能的低下会影响线粒体膜的电压,随后可引起细胞线粒体膜通透性的变化,由此凋亡诱导因子被释放进入细胞浆。 先前的研究已经描述了呼吸链功能低下的细胞系凋亡的分子机制。缺乏mtDNA 的U937细胞在TNF 加放线菌酮的作用下诱导了凋亡,最初是线粒体膜电压的降低和ROS结构的增加,随后产生了DNA的断裂(28)。此外,从缺失mtDNA的U937细胞分离得到线粒体能经受由于凋亡因子的释放而引起的通透性的变化(28)。上述的结果暗示了 呼吸链功能低下与体内凋亡升高相关的理论对于人类疾病产生了重大的影响。呼吸链功能低下已经证实在许多常见疾病(例如神经退化,心脏衰竭,真性糖尿病和衰老)的病理生理过程中扮演了重要的角色。有趣的是,在上述过程中都有细胞缺失或凋亡的发生。在恶性肿瘤和各种发生过度增生的综合症中,凋亡的减弱起了重要的作用。因此,化疗和放疗的目的在于诱导肿瘤细胞的凋亡。因此,通过调节呼吸链功能来增强或抑制凋亡对于各种疾病的治疗具有重要的作用。 |
参考文献
1. Li, P., Nijhawan, D., Budihardjo, I., Srinivasula, S. M., Ahmad, M., Alnemri, E. S. & Wang, X. (1997) Cell 91, 479–489.
2. Nagata, S. (1997) Cell 88, 355–365. 3. Luo, X., Budihardjo, I., Zou, H., Slaughter, C.&Wang, X. (1998) Cell 94, 481–490.
4. Sakahira, H., Enari, M. & Nagata, S. (1998) Nature (London) 391, 96–99.
5. Enari, M., Sakahira, H., Yokoyama, H., Okawa, K., Iwamatsu, A. & Nagata, S. (1998) Nature (London) 391, 43–50.
6. Liu, X., Zou, H., Slaughter, C. & Wang, X. (1997) Cell 89, 175–184.
7. Susin, S. A., Lorenzo, H. K., Zamzami, N., Marzo, I., Snow, B. E., Brothers, G. M., Mangion, J., Jacotot, E., Costantini, P., Loeffler, M., et al. (1999) Nature (London) 397, 441–446.
8. Du, C., Fang, M., Li, Y., Li, L. & Wang, X. (2000) Cell 102, 33–42.
9. Dey, R. & Moraes, C. T. (2000) J. Biol. Chem. 275, 7087–7094.
10. Li, K., Li, Y., Shelton, J. M., Richardson, J. A., Spencer, E., Chen, Z. J., Wang, X. & Williams, R. S. (2000) Cell 101, 389–399.
11. Wang, J., Wilhelmsson, H., Graff, C., Li, H., Oldfors, A., Rustin, P., Bruning, J. C., Kahn, C. R., Clayton, D. A., Barsh, G. S., et al. (1999) Nat. Genet. 21, 133–137.
12. Larsson, N. G., Wang, J., Wilhelmsson, H., Oldfors, A., Rustin, P., Lewandoski, M., Barsh, G. S. & Clayton, D. A. (1998) Nat. Genet. 18, 231–236.
13. King, M. P. & Attardi, G. (1989) Science 246, 500–503. 14. Rotig, A., de Lonlay, P., Chretien, D., Foury, F., Koenig, M., Sidi, D., Munnich, A. & Rustin, P. (1997) Nat. Genet. 17, 215–217.
15. Rustin, P., Chretien, D., Bourgeron, T., Gerard, B., Rotig, A., Saudubray, J. M. & Munnich, A. (1994) Clin. Chim. Acta 228, 35–51.
16. Wankerl, M. & Schwartz, K. (1995) J. Mol. Med. 73, 487–496.
17. Arai, M., Matsui, H. & Periasamy, M. (1994) Circ. Res. 74, 555–564.
18. Kanoh, M., Takemura, G., Misao, J., Hayakawa, Y., Aoyama, T., Nishigaki, K., Noda, T., Fujiwara, T., Fukuda, K., Minatoguchi, S., et al. (1999) Circulation 99, 2757–2764.
19. Melov, S., Coskun, P., Patel, M., Tuinstra, R., Cottrell, B., Jun, A. S., Zastawny, T. H., Dizdaroglu, M., Goodman, S. I., Huang, T. T., et al. (1999) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96, 846–851.
20. Ye, J., Wang, S., Leonard, S. S., Sun, Y., Butterworth, L., Antonini, J., Ding, M., Rojanasakul, Y., Vallyathan, V., Castranova, V., et al. (1999) J. Biol. Chem. 274, 34974–34980.
21. Leist, M., Gantner, F., Bohlinger, I., Germann, P. G., Tiegs, G. & Wendel, A. (1994) J. Immunol. 153, 1778–1788.
22. Latta, M., Kunstle, G., Leist, M.&Wendel, A. (2000) J. Exp. Med. 191, 1975–1985.
23. Silva, J. P., Ko¨hler, M., Graff, C., Oldfors, A., Magnuson, M. A., Berggren, P.-O. & Larsson, N.-G. (2000) Nat. Genet. 26, 336–340.
24. Mirabella, M., Di Giovanni, S., Silvestri, G., Tonali, P. & Servidei, S. (2000) Brain 123, 93–104.
25. Green, D. R. & Reed, J. C. (1998) Science 281, 1309–1312.
26. Jacobson, M. D., Burne, J. F., King, M. P., Miyashita, T., Reed, J. C.&Raff, M. C. (1993) Nature (London) 361, 365–369.
27. Jiang, S., Cai, J., Wallace, D. C. & Jones, D. P. (1999) J. Biol. Chem. 274, 29905–29911.
28. Marchetti, P., Susin, S. A., Decaudin, D., Gamen, S., Castedo, M., Hirsch, T., Zamzami, N., Naval, J., Senik, A.&Kroemer, G. (1996) Cancer Res. 56, 2033–2038.
29. Leist, M., Single, B., Castoldi, A. F., Kuhnle, S. & Nicotera, P. (1997) J. Exp. Med. 185, 1481–1486.
30. Hao, H., Morrison, L. E. & Moraes, C. T. (1999) Hum. Mol. Genet. 8, 1117–1124.
目录
专题文献 应用文献
应用抗体芯片对白血病免疫组型的分型
实验指南
特别推荐
蛋白组研究的完整解决方案——Genomic Solution Inc.蛋白质组学研究仪器和软件
最新动态