DNA Extractor^® Kit 实验方案
■ 方案1：血清中DNA 提取操作步骤
试剂准备：
1） DNA 提取之前，试剂提取如下：
       26 ml 碘化钠溶液加入6 ml 蒸馏去离子水稀释，
       再加入1 ml 月桂酰肌氨酸钠和65 μl 糖原溶液并混合均匀。
2） 向洗涤溶液（B）加入2 μl 糖原溶液并立即混合均匀。

注意事项：
1） 用于稀释Nal 溶液的蒸馏去离子水须去除DNA。
2） 配制好的洗涤溶液（B）在4℃至少能保存一周。如果需要少量的洗涤溶液（B），加入糖原
溶液到无菌离心管中至合适体积即可。
3） 在保存期间Nal 溶液会结晶，加热溶液至50℃可帮助溶解。

DNA 提取步骤：
1） 吸取100 μl 的血清样品加入1.5 ml 微量离心管；
2） 再加入300 μl 配制好的Nal 溶液至离心管并混合均匀；
3） 将离心管在60℃恒温容器中加热15 分钟；
4） 取出离心管，加入400 μl 异丙醇至离心管并混合均匀；
5） 离心管在室温静置15 分钟后离心10,000 g 15 分钟；
6） 尽可能多地吸取上清液，将离心管倒置在纸面上除去残留溶液；
7） 加入1 ml 配制好的洗涤溶液（B）重悬浮得到的白色沉淀，并使白色沉淀从离心管壁上弹开；
8） 短暂离心10,000 g 5 min，去除上清液，将剩余沉淀真空干燥，用于后续的DNA 分析。

■ 方案2: Threshold* 系统DNA 定量法的预处理

试剂预处理:
1） 将65 μl 糖原溶液加入26 ml 碘化钠溶液；
2） 将2 μl 糖原溶液加入40 ml 洗涤溶液（B），立即混合均匀。

注意事项：
1） 用于稀释碘化钠溶液的蒸馏去离子水须去除DNA。
2） 配制好的洗涤溶液（B）在4℃至少能保存一周。如果需要少量的洗涤溶液（B），加入糖原 溶液到无菌离心管中至合适体积即可。
3） 在保存期间碘化钠溶液会结晶，加热溶液至50℃可帮助溶解。
4） 提取步骤应在DNA 变性之前，因此重要的是使用无菌技术尽可能降低DNA 污染。预先包装好的无菌吸管、无菌试管和手套都要经过此步骤。

DNA 提取步骤：
1） 吸取400 μl 或500 μl 的样品加入2 ml 无菌带盖微量离心管并混合均匀；
2） 吸取20 μl 的月桂酰肌氨酸钠溶液加入微量离心管并混合均匀；
3） 再加入500 μl 包含糖原的碘化钠溶液至混合溶液，涡旋后在40℃保温15 分钟；
4） 加入900 μl 异丙醇至混合溶液，涡旋后静置于室温15 分钟；
5） 短暂离心10,000 g 15 min 后，能看见管壁有白色沉淀，吸取上清液后将离心管倒置于纸面去除残留溶液；
6） 加入800 μl 洗涤溶液（A）至离心管，剧烈涡旋使白色沉淀从离心管壁上弹开；
7） 短暂离心10,000 g 5 min 后，去除残留溶液；
8） 加入1500 μl 包含糖原的洗涤溶液（B）至离心管并涡旋，短暂离心10,000 g 5 min 后吸取上清液，剩余的白色沉淀包括DNA 和糖原载体；
9） 加入分析用缓冲液(Zero Calibrator buffer) 使白色沉淀溶解，用于后续的DNA 分析。

注意事项：
       请于各步骤使用搅拌器将溶液搅拌均匀。样品溶液里含有DNA 酶时，进行步骤2 之前请先进 行步骤3。步骤4 里样品溶解不完全时，请把保温温度升至40 - 60℃帮助溶解。但是含有部分蛋白（γ- 球蛋白）或高浓度蛋白的样品（＞ 50 mg/ml），加热可能会导致蛋白聚集，请注意。

* 为Molecμlar Devices 公司注册商标，是使用生物传感器的高灵敏度分析装置。