基因编辑细胞系常见问题解答
基因敲除(Knock out, KO)细胞在疾病基础研究和药物开发中应用广泛,但其构建过程较为繁琐,实验周期长,且可能由于sgRNA切割效率过低、存在混杂细胞等原因,导致难以筛选出单克隆纯合子;即使测序鉴定为纯合子,WB检测环节仍时常发现有蛋白残留现象。别再让这些困扰成为你科研路上的绊脚石,快来了解一下赛业生物的KO细胞株构建服务吧!
基于Smart-CRISPR™细胞基因编辑系统,我们能实现单克隆纯合子交付,快至1周。通过使用优化的转染体系将RNP直接递送到细胞内,脱靶效率降低明显;更有罕见病数据中心(RDDC)开发的RNA剪接模型工具提供支持,辅助筛选ORF移码的单克隆,助力挑选WB阴性克隆。现在下单,可享受低至6980元的优惠价格,欢迎拨打400-680-8038或邮件至info@cyagen.com联系我们。
类型 | 典型细胞株 | 交付标准 | 质控 | 订购 |
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肿瘤免疫细胞 | Jurkat, HepG2, Hela, SK-MES-1等 | 1个单克隆纯合子细胞株2管(106/管),实验报告 | PCR+Sanger测序等 | |
非癌永生化细胞 | BEAS-2B, HEK293, HSF, HK-2, AC16等 | PCR+Sanger测序等 | ||
诱导多能干细胞 | iPSC | PCR+Sanger测序+免疫荧光等 | ||
干细胞 | H1, H9 | PCR+Sanger测序+免疫荧光等 |
借助罕见病数据中心(RDDC)开发的RNA剪接模型工具,预测碱基序列突变后mRNA序列可能发生的剪切情况,辅助筛选ORF移码的单克隆,更好地规避在Western Blot环节检测出蛋白残留的风险。
RDDC分析目标克隆在gRNA位点插入4bp后产生选择性剪切识别位点,形成新的截短转录本,Western Blot检测到截短的蛋白,与RDDC预测结果一致。
RDDC分析目标克隆在gRNA位点插入1bp未产生选择性剪切识别位点,产生移码突变和提前终止,Western Blot检测蛋白为阴性,与RDDC预测结果一致。
从体内动物实验到体外细胞实验,拥有上万例成功基因编辑项目经验,可提供从细胞基因表达调控、细胞功能验证、小鼠疾病模型构建及表型分析的全流程服务。
由罕见病数据中心(RDDC)开发的RNA剪接模型工具提供支持,辅助筛选WB阴性克隆;基于Smart-CRISPR™细胞基因编辑系统,轻松实现基因敲除、基因敲入等多种策略,编辑效率高达90%。
我们建设了有各项参数明确、性能稳定的科研细胞库,极大程度规避了基因编辑对细胞的负面影响,目前已拥有超300种靶细胞、1500株以上细胞株成功案例和多篇文献引用发表。
相比于质粒或者病毒等基因敲除方法,RNP递送具有更高的特异性和编辑效率,新升级递送KO效率近100%,转染效率和活率>80%。
Di-(2-ethylhexyl) phthalate exposure leads to ferroptosis via the
HIF-1α/HO-1 signaling pathway in msouse testes.
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研究人员构建了HIF-1α基因敲除的Leydig和Sertoli细胞系(由赛业生物提供),通过Sanger测序和Western blotting检测,确认了敲除细胞系中的HIF-1α被成功敲除。与野生型细胞相比,HIF-1α-KO的细胞系在MEHP刺激下细胞活力受损的程度有明显改善。同时,脂质过氧化和亚铁超载也受到抑制。分别使用qPCR和Western印迹法评估Hmox1和HO-1水平的表达,发现敲除Hif-1α能逆转MEHP刺激下的Hmox1和HO-1表达水平上调。此外,MEHP刺激后ROS爆发和细胞死亡程度也在敲除HIF-1α后减弱。Western印迹显示敲除HIF-1α恢复了ACSL4、FTH1和SLC7A11的表达,以及抑制GPX4的表达。由此表明,MEHP刺激以HIF-1α依赖的方式导致睾丸Leydig和Sertoli细胞的铁死亡。