通过对毕赤酵母(Pichia pastoris)进行代谢工程改造,实现了高效生产富含支链氨基酸的单细胞蛋白质

《Bioresource Technology》:Metabolic engineering of Pichia pastoris for high-efficiency production of branched-chain amino acids -enriched single-cell protein

【字体: 时间:2026年01月10日 来源:Bioresource Technology 9

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  本研究通过代谢工程与人工智能结合,构建了高支链氨基酸(BCAAs)含量的毕赤酵母工程菌株。过表达Ilv3基因并利用PMPEPE模型筛选出含35% BCAAs的重组蛋白M0504,显著提升发酵液BCAAs含量至9.8 mg/100 mg(较野生型提高37.1%),同时优化了生物量积累。转录组分析表明代谢重编程有效调控了BCAAs合成途径及相关代谢稳态。该策略为功能性单细胞蛋白工业化生产提供了新范式。

Cancan Dong|Kai Hong|Fan Wu|Yanfeng Wang|Youyan Rong|Xin Wu|Jian Zhang|Le Gao
天津科技大学生物工程学院,中国天津300457

摘要

支链氨基酸(BCAAs),包括亮氨酸、异亮氨酸和缬氨酸,是动物必需的营养素,必须从饮食中获取,因为哺乳动物无法自行合成它们。本研究通过代谢工程和人工智能的协同整合,开发了一种工程化的Pichia pastoris菌株,以高效生产富含BCAAs的单细胞蛋白(SCP)。首先,我们利用CRISPR-Cas9技术过表达Ilv3基因(编码二羟基酸脱水酶),增强了BCAAs的生物合成。随后,PMPEPE(Pichia pastoris蛋白质表达增强预测模型)筛选出高BCAAs含量的内源性蛋白质,从而实现了基于AI的计算机辅助设计,得到了BCAAs含量为35%的M0504变体。这种工程蛋白在P. pastoris中成功表达。高细胞密度发酵实验表明,与对照组相比,工程菌株HTX33-ILV3-M0504在甲醇诱导下的粗蛋白含量显著增加,生物质积累也更为优越。SCP中的BCAAs含量达到9.8 mg/100 mg(相当于发酵液中的11.9 g/L),比野生型菌株HTX-33(7.2 mg/100 mg)提高了37.1%。转录组分析显示,Ilv3的过表达上调了BCAAs合成途径中的关键基因,并通过TCA循环、甲醇同化和碳氮共利用调节了代谢稳态。这项工作为工业生产富含BCAAs的功能性SCP提供了一种可扩展的策略。

引言

支链氨基酸(BCAAs)包括必需氨基酸l-缬氨酸(Val)、l-亮氨酸(Leu)和l-异亮氨酸(Ile),是哺乳动物生理过程的基本营养素,在代谢调节、免疫功能和疾病调控中起着关键作用(Siddik & Shin, 2019)。大量研究表明,BCAAs作为重要的代谢调节因子,影响脂肪分解和合成(Nishimura et al., 2010)、葡萄糖代谢和转运(Doi et al., 2003)、肠道屏障完整性和营养吸收(Sun et al., 2015)以及胚胎发育(Teodoro et al., 2012)。新的证据揭示了BCAAs的更多生理功能:它们通过改善局部氨基酸转运能力增强肠道健康,通过增加β-防御素表达和细胞因子谱的改变增强免疫力,并可作为慢性疾病(包括糖尿病和胰岛素抵抗)早期检测的潜在生物标志物(Newgard et al., 2009, Zhang et al., 2017)。然而,哺乳动物缺乏BCAAs的合成能力,必须完全从饮食中获取。因此,在动物饲料中战略性地补充BCAAs可以为细胞增殖和发育提供必要的营养支持。这种方法可以显著降低饲料中的粗蛋白含量,同时提高饲料利用率(Han et al., 2019),从而推动了全球饲料配方中BCAAs添加量的快速增加。
近年来,人们利用微生物作为宿主细胞和可再生生物质作为原料,探索了BCAAs的工业生产(Zhang et al., 2021, Zhang et al., 2021)。多种微生物菌株,主要是Corynebacterium glutamicum(Yu et al., 2021)和Escherichia coli(Ding et al., 2023),被用于BCAAs的生产。BCAAs的生产效率往往受到微生物代谢调节和合成能力的限制。除了传统的通过突变筛选构建工程菌株的方法(Wendisch et al., 2006, Zhang et al., 2021, Zhang et al., 2021)外,通过消除限速酶的反馈抑制来促进代谢通量,并维持细胞内的氧化还原平衡,已成为构建所需产品的常规步骤(Feng et al., 2018, Wang et al., 2013, Wang et al., 2022, Wang et al., 2022)。最近,新的工程工具和分析技术的出现进一步提高了BCAAs生物合成的效率,包括测序技术、高通量筛选设备(Lv et al., 2021)、分子生物传感器(Eggeling et al., 2015)、多变量模块化工程(Zhang et al., 2022)和组学方法(Crown et al., 2015)。然而,生物质产量与生产效率之间的平衡无疑是高效BCAAs合成的核心问题。构建高效的微生物细胞工厂仍然面临诸多挑战。此外,从发酵系统中分离和纯化这些氨基酸产物需要额外成本,使得BCAAs的生产和应用对环境不利。近年来,单细胞蛋白(SCP)研究的持续进展为在SCP中复合形式生产BCAAs提供了可行的选择。P. pastoris是生产富含BCAAs的SCP的理想宿主,尤其是随着蛋白质数据库筛选和人工蛋白质设计技术的进步,这可以增强P. pastoris中高BCAAs含量蛋白质的表达(L & Vasu, 2020)。P. pastoris在食品技术中的应用最重要的突破是获得了美国食品药品监督管理局(FDA)的普遍认可的安全性(GRAS)认证,以及FDA对重组蛋白的批准(Vijayakumar & Venkataraman, 2024)。此外,P. pastoris的发酵过程是一种经济高效且方便的方式,可以生产食品级质量的代谢产物,其生长和代谢产物的生产已在使用廉价工业原料甲醇的培养基中得到验证(Gao et al., 2022),因此可以认为这是一种经济环保的BCAAs生产系统。在P. pastoris发酵中使用工业副产品可以吸引更多人关注这些发酵过程的规模化(Gao et al., 2023, Meng et al., 2023)。
在本研究中,我们首先利用合成生物学技术改造了P. pastoris中的BCAAs生物合成途径,成功构建了一种高BCAAs产量的菌株。然后,我们结合了人工智能,使用Pichia pastoris蛋白质表达增强预测模型(PMPEPE)筛选出在P. pastoris中高表达且富含BCAAs的内源性蛋白质。通过结构引导的氨基酸替换,我们设计了一种BCAAs含量为35%的蛋白质。通过结合代谢工程和AI驱动的蛋白质设计,我们显著提高了BCAAs的生产效率。

部分摘要

菌株和培养

P. pastoris菌株在含有20 mg/L葡萄糖、20 mg/L蛋白胨和10 mg/L酵母提取物的YPD培养基中培养。E. coli DH5α(质粒构建的宿主细菌)在含有5 mg/L酵母提取物、10 mg/L色氨酸和10 mg/L NaCl的LB培养基中于37℃培养,并添加50 μg/mL kanR以维持质粒。使用甲醇在BMGY(缓冲甘油复合培养基)和BMMY(缓冲甲醇复合培养基)中诱导P. pastoris菌株表达富含BCAAs的修饰蛋白。

通过增加合成途径的代谢通量来提高BCAAs产量

Ilv3Ilv5分别是IlvDIlvE的直系同源物,是BCAAs生物合成途径中的关键酶。过表达IlvDIlvE已被证明可以缓解l-异亮氨酸(Shi et al., 2025)和l-缬氨酸(Hao et al., 2024, Holatko et al., 2009)的生物合成瓶颈。同时,BCAAs氨基转移酶(bat)在BCAAs和支链α-酮酸之间的双向氨基酸转移中起重要作用(Chen et

结论

本研究通过微生物发酵开发了一种富含BCAAs的P. pastoris SCP,满足了功能性蛋白质生产的需求。通过在P. pastoris底盘中过表达关键的BCAAs生物合成基因Ilv3,增强了该菌株的内源性BCAAs合成能力。随后,在这种工程底盘中表达了经过筛选和计算优化的富含BCAAs的异源蛋白。这一策略使目标蛋白浓度达到了178 mg/L

未引用的参考文献

Sunil和Vasu (2020)。

CRediT作者贡献声明

Cancan Dong:撰写——原始草稿,数据整理。Kai Hong:撰写——原始草稿,正式分析,数据整理。Fan Wu:正式分析。Yanfeng Wang:正式分析,数据整理。Youyan Rong:正式分析,数据整理。Xin Wu:监督。Jian Zhang:撰写——审稿与编辑。Le Gao:撰写——审稿与编辑,监督,资金获取。

利益冲突声明

作者声明他们没有已知的财务利益或个人关系可能影响本文所述的工作。

致谢

本工作得到了中国国家重点研发计划2023YFD13007004)的支持。

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