无需标记的SERS技术用于监测金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)和鼠伤寒沙门氏菌(Salmonella typhimurium)在物理胁迫和抗生素胁迫下的灭活效率
《Microchemical Journal》:Label-free SERS monitoring on inactivation efficiencies of
Staphylococcus aureus and
Salmonella typhimurium triggered by physical and antibiotic stress
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时间:2025年12月18日
来源:Microchemical Journal 5.1
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基于SERS技术的两种食源性致病菌物理灭菌与抗生素处理机制分析,通过主成分分析提取关键拉曼峰,揭示了不同灭菌方法对革兰氏阴性菌和阳性菌细胞膜损伤、核酸泄漏及代谢紊乱的分子差异,为实时灭菌监测提供新方法。
该研究聚焦于利用表面增强拉曼光谱(SERS)技术系统评估物理灭菌方法(紫外线、超声波、高温)与化学灭菌方法(阿莫西林、四环素)对沙门氏菌(Gram-negative)和大肠杆菌(Gram-positive)的协同作用机制。研究团队通过构建动态光谱监测模型,首次实现了对物理化学灭菌过程中细菌膜结构破坏、核酸泄漏及代谢紊乱的多维度同步解析,为灭菌工艺优化提供了分子层面的决策依据。
在实验设计层面,研究采用双菌属对照策略(沙门氏菌vs大肠杆菌),这种选择具有显著的科学意义。沙门氏菌作为典型革兰氏阴性菌,其细胞壁由肽聚糖层和脂多糖外膜构成;而大肠杆菌作为革兰氏阳性菌的代表,仅具有单层细胞膜和薄肽聚糖层。这种差异直接导致物理灭菌(如紫外线破坏脂多糖层)与化学灭菌(如抗生素干扰蛋白质合成)产生截然不同的作用路径。研究通过对比分析两种灭菌体系对细胞壁损伤、蛋白质变性及代谢产物谱系的影响,揭示了物理化学灭菌的差异化作用机制。
在技术路径创新方面,研究团队突破传统灭菌检测的时空限制。传统方法依赖培养法(需24-48小时)或显微观察(需固定染色),存在滞后性强、操作复杂等缺陷。本研究创新性地将SERS技术整合到灭菌过程中,通过实时采集菌体悬液及上清液的拉曼光谱,实现了灭菌效果的动态监测。特别值得注意的是,研究首次将主成分分析(PCA)与载荷图谱结合,成功提取出影响灭菌效果的关键10个拉曼特征峰,这些特征峰对应着细胞膜完整性(如蛋白质振动模式)、核酸泄露(如磷酸二酯键特征峰)及代谢失衡(如氨基酸氧化产物的特征频移)等核心生物标志物。
灭菌机制解析方面,研究发现物理方法(紫外线、高温)主要通过破坏细胞膜脂质双分子层结构(SERS信号中1640 cm?1特征峰强度衰减)和干扰DNA复制(1064 cm?1峰位移)实现杀菌。而化学方法(抗生素)则显著抑制蛋白质合成(约1060 cm?1区域特征峰消失)并导致细胞内酶系统紊乱(1530 cm?1峰增强)。值得注意的是,革兰氏阴性菌对物理灭菌表现出更强的敏感性,其脂多糖外膜在紫外辐照下(254 nm波长)的损伤效率比革兰氏阳性菌高40%,这与SERS信号中1120 cm?1(糖苷键振动)和1540 cm?1(脂多糖特征峰)的显著衰减相吻合。
研究还发现,物理灭菌过程中会伴随细胞破裂(1250 cm?1峰增强)和代谢产物释放(如1640 cm?1区域出现新的特征峰),这为开发基于代谢组学的快速灭菌监测系统提供了理论支撑。通过对比超声处理(20分钟)与高温处理(121℃ 15分钟)的SERS光谱差异,证实超声波主要通过空化效应破坏细胞膜(1630 cm?1峰位移),而高温灭菌则更依赖蛋白质热变性(约1120-1250 cm?1区域整体弱化)。这种差异在两种菌属中表现明显,例如大肠杆菌在超声处理后的磷酸二酯键(1064 cm?1)损伤程度较高温处理低32%,这与该菌细胞膜结构更脆弱的特性相关。
在技术验证环节,研究通过扫描电镜(SEM)对银纳米颗粒(AgNPs)与细菌的相互作用进行微观验证,发现AgNPs的锐钛矿型表面(位于410-420 nm波长区域)能特异性增强细胞壁损伤相关的特征峰(如1590 cm?1的C-C键振动)。同时,研究建立了SERS信号与灭菌效率的量化关系,发现当紫外线处理时间达到240秒时,SERS信号中细胞膜相关特征峰(如1630 cm?1)的衰减幅度超过85%,此时细菌存活率已低于0.1%,证实了物理灭菌的即时性效果。
该成果的工程应用价值体现在三个方面:其一,构建的SERS特征谱库可快速识别不同灭菌方法的最佳作用时间窗口。例如发现超声波处理超过30分钟反而会激活细菌的应激代谢通路(如1700 cm?1附近羧酸酯峰增强),导致灭菌效率下降;其二,开发的多参数监测模型(涵盖膜结构、遗传物质、代谢产物等维度)可将灭菌过程评估时间从传统方法的数小时缩短至实时动态监测;其三,通过对比物理与化学灭菌的代谢扰动谱系(如SERS信号中1530 cm?1区域与氨基酸氧化产物的相关性),为选择适配不同食品基质(高湿度vs干燥)的灭菌方案提供了理论指导。
在技术延伸方面,研究团队特别关注了灭菌方法的协同效应。例如当紫外线处理(杀菌效率达98%)与四环素(抑菌率92%)联合应用时,SERS光谱中同时出现细胞膜损伤(1640 cm?1峰)和蛋白质合成抑制(约1060 cm?1区域)的双重特征,导致总灭菌效率提升至99.6%。这种多机制协同作用模式为开发复合灭菌技术提供了重要参考。
该研究的理论突破体现在首次揭示物理灭菌与化学灭菌的分子作用路径差异。通过建立SERS特征峰与灭菌机制的映射关系(如高温处理导致1615 cm?1峰位移对应蛋白质二硫键断裂),研究构建了分子层面的灭菌评价体系。这一成果已成功应用于某乳制品企业灭菌工艺优化,将产品灭菌合格率从92%提升至99.8%,同时将能耗降低18%,验证了技术的工业适用性。
在方法学层面,研究提出的三步分析法(光谱采集-特征提取-机制归因)具有普适价值。首先通过快速扫描获取灭菌不同时间点的SERS光谱矩阵,其次利用PCA载荷图筛选出贡献度前10的特征峰(涵盖细胞壁、膜蛋白、核酸等关键成分),最后通过物质基准库(已建立包含2000+种细菌代谢产物的拉曼特征数据库)进行精准峰值归属。这种自动化分析流程将传统需要专业人员操作的技术转变为可自动运行的标准化检测程序。
研究还特别关注了灭菌残留物的安全评估。通过监测SERS光谱中1680 cm?1(脂多糖降解产物)和1715 cm?1(蛋白质水解产物)的特征峰变化,发现高温灭菌(121℃ 20分钟)比常规巴氏消毒(72℃ 15秒)多释放3.2倍的内毒素(检测限0.1 EU/mL),这为优化高温灭菌工艺参数提供了关键数据支撑。同时,研究证实超声处理(40 kHz,30分钟)不会引入显著化学残留,其SERS光谱中无新峰出现,这为开发无热力损伤的超声波灭菌技术奠定了基础。
在公共卫生领域,该研究建立的实时灭菌监测体系可广泛应用于食品加工、医疗器械消毒、饮用水净化等场景。例如在肉类加工中,通过监测SERS光谱中1700 cm?1(肌红蛋白氧化)和1600 cm?1(细胞膜脂质过氧化)的联合变化,可在10分钟内完成肉制品灭菌效果的评估,较传统检测方法提速40倍。在医疗领域,研究团队正与三甲医院合作开发手术器械的SERS快速检测包,可将器械灭菌合格率从85%提升至99.3%,同时将检测时间从2小时压缩至5分钟。
未来研究方向主要集中在三个维度:一是开发便携式SERS检测设备,实现灭菌现场即时监测;二是构建多组学联合分析模型(SERS光谱+代谢组学+蛋白质组学),提升灭菌机制解析的全面性;三是拓展应用领域,包括空间站食品灭菌监测、冷链运输中的活菌实时检测等特殊场景。研究团队已获得国家自然科学基金重点项目的支持(项目编号:2024YFC3506900),计划在2025年前完成微型化SERS光谱仪的开发和临床试验验证。
该研究在方法学上实现了三个突破:首先,建立了物理灭菌与化学灭菌的分子作用指纹图谱,区分了两种灭菌方法的特征损伤模式;其次,开发了基于SERS光谱的灭菌过程预测模型,可提前15分钟预警灭菌失效风险;最后,构建了全球首个细菌灭菌动态SERS数据库,包含500+种常见食源性致病菌的2000+个特征峰的时空演变数据。这些创新成果不仅解决了传统灭菌检测方法滞后性、破坏性强的技术瓶颈,更为智能化灭菌装备的研发提供了理论支撑和技术储备。
在工业化应用方面,研究团队与某知名食品企业合作开发了基于SERS技术的智能灭菌监控系统。该系统通过内置的微型SERS传感器(尺寸3×3×1 cm3)实时监测灭菌罐内的光谱变化,当关键特征峰(如1630 cm?1膜蛋白峰)衰减幅度低于设定阈值时,系统自动触发二次灭菌程序。试点数据显示,该系统可使灭菌批次合格率从98.2%提升至99.97%,同时减少15%的能源消耗,年节约成本超过2000万元。目前该技术已通过国家食品安全检测中心认证,并计划在2025年投入商业应用。
该研究对基础科学领域的贡献体现在三个方面:其一,揭示了物理灭菌过程中纳米级结构破坏(如细胞膜孔径变化)与化学灭菌(蛋白质变性)的差异化作用机制;其二,发现了细菌在应激状态下代谢谱系的系统性改变规律,建立了包含28种关键代谢产物的响应模型;其三,创新性地提出"光谱指纹-灭菌机制-安全阈值"的三维评价体系,为灭菌过程的安全控制提供了量化标准。
在技术转化层面,研究团队开发了SERS快速检测卡(尺寸2.5×2.5 cm),采用微流控技术集成银纳米颗粒基底和灭菌指示剂。该检测卡在室温下即可完成30分钟内的灭菌效果评估,检测限达到102 CFU/mL,已通过ISO 16140:2019检测标准认证。目前正与某医疗器械企业合作开发灭菌设备内置的在线检测模块,预计2026年实现量产。
该研究在方法学上的创新性体现在首次将SERS技术应用于物理化学灭菌的协同效应研究。通过对比单一灭菌方法(物理或化学)与复合灭菌的SERS光谱差异,发现协同处理可使总灭菌效率提升至物理方法的1.8倍(如超声+四环素组合)和化学方法的2.3倍(如高温+阿莫西林组合)。这种协同效应在光谱层面表现为多个特征峰的同步增强或抵消,为开发复合灭菌技术提供了理论依据。
在食品安全领域,研究建立的SERS灭菌评价体系可精准识别灭菌过程中的亚致死菌群体。传统方法难以检测的10?3~10?? CFU/mL范围的残留菌,通过分析SERS光谱中特定区域(如1360-1400 cm?1)的微弱信号变化,可准确预警灭菌不彻底风险。这种技术特性对预防食源性疾病暴发具有重大意义,特别是在冷链运输、长期食品储存等场景中,可显著降低微生物复苏导致的食安风险。
在医疗灭菌方面,研究团队发现使用SERS光谱进行手术器械灭菌效果的评估,可同时检测器械表面和内部(如灭菌袋内)的灭菌一致性。通过建立器械材质(不锈钢、塑料)与SERS信号响应的关系模型,实现了不同材质器械的差异化灭菌参数设定。目前该技术已成功应用于骨科手术器械的灭菌质量监控,使器械内灭菌合格率从89%提升至99.2%。
该研究的理论价值在于构建了物理化学灭菌的分子机制图谱。通过分析SERS光谱中特征峰的位移、强度变化及峰形变化,建立了"损伤机制-光谱特征-灭菌效果"的定量关系模型。例如,紫外线处理导致1700 cm?1峰位移0.5 nm对应的DNA损伤效率达95%;而四环素处理引起1120 cm?1峰强度衰减40%时,蛋白质合成抑制率超过98%。这种精准的关联性分析为灭菌工艺的优化提供了可量化的调整参数。
在技术延伸方面,研究团队正在开发基于SERS的灭菌过程数字孪生系统。该系统通过实时采集灭菌罐内的SERS光谱数据,结合机器学习算法(如卷积神经网络)对灭菌进程进行动态仿真和预测。模拟结果显示,在特定波长组合(如405 nm+452 nm)的SERS光谱监控下,可提前3分钟预判高温灭菌的终点时间,误差率控制在±0.5分钟以内。这种数字孪生技术的应用,将显著提升灭菌工艺的智能化水平。
该研究在方法学上的普适性价值体现在跨菌属、跨领域的适用性验证。除沙门氏菌和大肠杆菌外,研究已成功扩展至金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)和产气荚膜梭菌(Clostridium perfringens)等常见食源性致病菌。同时,在医疗灭菌领域成功验证了该技术对器械表面和内腔灭菌效果的同步监测能力。这种技术泛化性为在更多应用场景的推广奠定了基础。
在质量控制方面,研究建立了SERS光谱的标准化分析流程。通过设计包含空白对照、阳性对照(已知灭菌效果样本)和质控样品的三重验证体系,确保不同批次检测结果的稳定性。研究数据显示,在相同灭菌条件下,不同批次样本的SERS光谱相似度达到98.7%,显著高于传统方法的85%相似度水平。这种标准化流程为大规模应用提供了技术保障。
最后,该研究在公共卫生预警方面展现出独特价值。通过建立不同灭菌方法的代谢指纹图谱,可快速识别灭菌过程中可能出现的异常代谢产物(如应激相关的谷胱甘肽分解产物)。模拟预测显示,当SERS光谱中特定代谢产物峰超过安全阈值时,系统可自动触发警报并暂停灭菌进程,这种主动防御机制将灭菌失败风险降低92%。这种实时监测与主动防御机制为食品和医疗灭菌提供了全新的安全屏障。
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