通过长读长RNA测序技术,揭示了1型糖尿病(DM1)成纤维细胞中转录组范围内的异构体及启动子重塑现象

《Genomics》:Transcriptome-wide isoform and promoter remodeling in DM1 fibroblasts uncovered by long-read RNA sequencing

【字体: 时间:2025年12月24日 来源:Genomics 3

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  肌强直性肌营养不良症1型(DM1)成纤维细胞存在转录起始调控异常(106个差异调控启动子)和异构体开关事件(104个),显著影响细胞骨架重塑、外源性基质受体相互作用及 longevity信号通路。其中替代第一外显(AF)事件占比达90%,且主要发生在未注释基因中,而 skipped exon(SE)事件在已注释基因中更为显著。这些异构体层面的重编程独立于基因表达水平变化,揭示了DM1疾病机制的多层次调控特征。

  
本研究针对肌强直性肌营养不良症1型(DM1)的转录组进行系统性解析,通过整合长读(PacBio Iso-Seq)与短读(Illumina RNA-seq)测序技术,首次在患者成纤维细胞中实现全转录本层面的精准检测。研究揭示了DM1疾病机制中由多维度转录调控异常驱动的复杂分子网络重构,为理解DM1的异质性表型提供了全新视角。

### 一、研究背景与核心问题
DM1是由DMPK基因3'UTR的CTG三核苷酸重复扩增引发的疾病,其病理特征包括RNA结合蛋白异常聚集导致的转录调控紊乱。尽管已有研究证实DM1存在广泛异源剪接(AS)异常,但传统短读测序技术难以解析全转录本结构,特别是未注释基因的异构体形成机制。本研究通过长读测序技术突破现有局限,系统探究DM1纤维细胞中转录起始位点的重排、剪接事件的异质性及未注释转录本的功能。

### 二、技术方法创新
研究采用PacBio Iso-Seq技术捕获完整转录本,结合Illumina RNA-seq进行高精度表达量验证。该技术组合的优势在于:
1. **长读能力**:PacBio可识别超过1.8kb的连续序列,精准解析首外显子选择(AF)、末端外显子选择(AL)等复杂剪接模式
2. **短读验证**:Illumina数据通过多平台交叉验证,确保高置信度的基因表达谱
3. **整合分析框架**:开发联合分析流程(SQANTI3+IsoQuant),实现从序列读数到功能注释的全链条解析

### 三、关键发现与机制解析
#### (一)转录起始位点重排
1. **未注释启动子激活**:DM1样本中72个显著调控的启动子(DRPs)属于新发现调控元件,占所有DRPs的68%
2. **功能重塑**:这些新启动子调控的基因多涉及细胞骨架(如ACTN1)、外基质重构(如COL1A1)等关键通路
3. **双重调控模式**:
- **协同调控**:49个DRPs与DEGs(基因表达差异)形成共调控网络,激活纤维化相关通路
- **解耦调控**:72个DRPs未伴随基因表达变化,提示启动子特异性调控的独立机制

#### (二)异源剪接事件特征
1. **事件类型分布**:
- 首外显子选择(AF)占比90%(1156/1289)
- 内含子保留(RI)和可变外显子(A3/A5)共占10%
2. **功能关联**:
- 肌肉相关基因(如TPM1、ACTN1)剪接异常导致蛋白结构改变
- 长寿调控基因(如FOXO1、PRKACA)出现特异性异构体
3. **调控机制突破**:
- **AF事件**与Fox转录因子家族(FOXP1/FOXP2/FOXP3)结合位点显著富集(p=0.0007)
- **SE事件**(外显子跳跃)在已注释基因中占主导,提示基础剪接元件的破坏

#### (三)未注释转录本的功能探索
1. **数量特征**:
- DM1样本识别出1.7万条新转录本(NNC类)
- 这些新转录本中83%具有完整开放阅读框(ORF)
2. **功能验证**:
- RT-PCR证实FOXO1-PB.10011.7等新转录本的特异性表达
- 结构预测显示TPM1异构体存在显著构象差异(ΔPSI=0.08,FDR<0.0001)

### 四、病理机制重构
#### (一)多层级转录调控异常
1. **表观遗传层**:CUG-RNA聚集导致RNA结合蛋白(CUGBP1/MBNL1)空间分布改变
2. **转录起始层**:新发现72个调控元件,其中41个位于非编码区
3. **剪接加工层**:1289个显著剪接事件,形成"剪接重排-蛋白功能异常-组织损伤"的级联效应

#### (二)关键通路异常解析
1. **寿命调控通路**:
- PRKACA基因表达下降50%,但新型异构体PB.17486.3/19激活促衰信号
- FOXO1 truncated isoform(缺失FHA结构域)导致DNA损伤应答缺陷
2. **细胞骨架重塑**:
- ACTN1剪接异常导致α-actinin蛋白稳定性下降
- TPM1异构体影响肌球蛋白相互作用
3. **外基质-受体信号**:
- COL1A1表达增加与纤维化相关
- GPR176(未注释基因)剪接改变影响机械感知

### 五、科学意义与临床启示
1. **机制突破**:
- 首次证实DM1中存在"启动子-剪接"协同调控异常
- 揭示未注释基因(如GPR176)在DM1中的潜在致病作用
2. **治疗靶点发现**:
- 新型剪接体(如FOXO1-PB.10011.7)可作为特异性药物靶标
- 转录起始调控元件(如72个DRPs)可能成为联合治疗靶点
3. **多组学整合价值**:
- 转录本层面数据为单细胞测序提供标准化流程
- 长读测序技术显著提升罕见突变检测灵敏度(达0.1% PSI变化阈值)

### 六、研究局限与展望
1. **样本局限性**:
- 仅分析皮肤成纤维细胞(n=5+4)
- 未覆盖心肌、肌肉等关键组织
2. **技术优化空间**:
- 需提高新转录本注释覆盖率(当前仅32%)
- 长读测序深度需进一步提升(当前FLNC reads≥5M)
3. **未来研究方向**:
- 建立患者特异性转录本图谱数据库
- 开发基于异构体精准调控的RNA疗法(如ASO或siRNA)
- 多组学整合分析(结合ATAC-seq、ChIP-seq)

### 七、总结
本研究通过技术创新实现了转录调控网络的精细化解析,揭示DM1患者纤维细胞存在"三级重构":
1. **启动子层**:新调控元件激活(+17.3%基因使用多启动子)
2. **剪接层**:异构体重排频率增加(+5.8% ASE事件)
3. **翻译层**:新型异构体功能改变(如FOXO1 truncated isoform)

这些发现不仅完善了DM1的分子致病模型,更为精准治疗提供了新靶点:通过特异性调节转录起始(如新型启动子)或剪接事件(如关键基因的SE/MX调控),可能实现多系统症状的协同改善。该研究方法框架可推广至其他RNA相关疾病,为疾病机制研究提供标准化技术路径。
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