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基于机制解析的化学与光诱导cGAS激活的理性设计
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年04月03日 来源:Communications Biology 5.2
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编辑推荐:本研究针对cGAS-STING通路中DNA传感器cGAS的相分离调控机制不明问题,通过dcFCCS技术系统解析了G3BP1/PCBP1增强型和ORF9/ORF52/VP22抑制型蛋白调控cGAS-dsDNA相分离的分子机制,发现蛋白-cGAS结合强度是调控关键,并据此开发了化学诱导(FRB-FKBP)和光诱导(pMag-nMagHigh1)两套精准调控系统,为免疫信号操控提供了新工具。
针对这一科学难题,研究人员展开系统性研究。通过双色荧光交叉关联光谱(dcFCCS)技术,首次在纳米尺度定量解析了不同调控蛋白影响cGAS-dsDNA相分离的动力学参数,揭示出"蛋白-cGAS结合亲和力"是决定相分离促进或抑制的关键开关:当G3BP1/PCBP1等宿主蛋白以Kd≈160 nM强结合cGAS时,可形成预凝聚体促进DNA结合;而病毒蛋白虽与DNA结合更强(Kd≈100 nM),但因与cGAS结合弱(Kd≈2000 nM),反而将cGAS排挤出凝聚相。这一发现为理性设计调控工具奠定基础。
研究团队据此开发出两套精准调控系统:化学诱导系统利用雷帕霉素介导的FRB-FKBP二聚化,将抑制性病毒蛋白转化为cGAS激活剂,使TBK1磷酸化水平提升2-5倍;光控系统采用蓝光激活的pMag-nMagHigh1二聚体,5分钟内即可诱导cGAS重入凝聚相,且具有单细胞空间精度和可逆性(关闭光源5小时后解离)。这些工具不仅证实了结合强度决定相分离方向的假说,更实现了对先天免疫信号的时空调控。
关键技术方法包括:1)dcFCCS定量相分离粒径与组分比例;2)FRAP验证凝聚体流动性;3)体外cGAMP合成效率检测;4)HEK293T细胞中TBK1/IRF3磷酸化及IFN-β mRNA表达分析;5)光控系统采用470 nm蓝光LED照射。
研究结果部分揭示多个重要发现:
"Regulation of condensate formation and enzymatic activity of cGAS by accessory proteins"显示,G3BP1/PCBP1使凝聚体粒径增加至约200 nm,而病毒蛋白将其缩减至50 nm,且临界浓度提升5倍。
"Condensate formation is regulated by binding affinities"通过定量Kd值,建立结合强度-功能关联:G3BP1与cGAS结合Kd=134±28 nM,远强于ORF9的Kd=1980±310 nM。
"Chemical-inducible cGAS phase separation"证实雷帕霉素使cGAS-FRB在2分钟内重入凝聚相,酶活恢复至对照组的200-500%。
"Light-inducible cGAS phase separation"展示蓝光照射5分钟即可诱导cGAS-pMag定位病毒蛋白凝聚体,且该过程可逆。
这项发表于《Communications Biology》的研究,首次从分子互作强度角度解析了相分离调控的普适规律,其开发的光化学工具不仅适用于cGAS系统,还可拓展至NPR1-CRL3-dsDNA等其它核酸-蛋白相分离体系。该工作为抗病毒药物设计(如阻断ORF52-DNA结合)和自身炎症疾病治疗(如增强ZCCHC3相分离)提供了新思路,彰显了基础机制研究对生物医学工具开发的指导价值。
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