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链球菌血群(S. sanguinis)新型菌毛组分PilX的鉴定及其在生物膜形成中的关键作用
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年06月06日 来源:Journal of Oral Biosciences 2.6
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本研究针对口腔共生菌链球菌血群(S. sanguinis)通过菌毛介导生物膜形成和感染性心内膜炎的机制展开探索。研究人员通过构建突变株结合免疫印迹、免疫共沉淀等技术,首次鉴定出新型菌毛尖端蛋白PilX(SSA1635),证实其通过分选酶SrtC介导的异肽键参与菌毛聚合,并显著影响生物膜形成能力。该发现为阐明口腔定植和病原菌感染机制提供了新靶点。
在口腔这个复杂的微生态系统中,链球菌血群(Streptococcus sanguinis)扮演着双重角色——既是牙菌斑形成的"先锋菌",又是感染性心内膜炎的致病元凶。这种革兰氏阳性菌通过其表面特殊的毛发状结构——菌毛(pili),牢牢粘附在牙齿表面并形成顽固的生物膜(biofilm)。虽然已知SK36菌株的菌毛由PilA、PilB、PilC三种蛋白组成,但基因组中毗邻菌毛基因簇的ssa1635基因始终是个未解之谜。这个基因是否编码新的菌毛组分?它在细菌定植和致病过程中又扮演什么角色?这些问题成为破解链球菌血群感染机制的关键拼图。
来自大阪大学和鹿儿岛大学的研究团队在《Journal of Oral Biosciences》发表的研究给出了答案。研究人员采用免疫印迹(Western blot)和免疫共沉淀(co-IP)技术分析突变株蛋白互作,通过唾液包被表面生物膜形成实验和HeLa细胞粘附实验评估功能,并结合生物信息学预测蛋白特性。
在"Results"部分,研究揭示:1)通过"SSA1635 domain organization"分析发现该蛋白具有典型菌毛蛋白特征,与pilC-srtC共转录;2)"Immunoprecipitation assays"证实SSA1635(命名为PilX)与PilA/B/C形成复合物,分选酶SrtC介导其定位在菌毛尖端;3)关键发现是ΔpilX突变株不仅丧失生物膜形成能力,更意外地导致其他菌毛蛋白聚合障碍,提示PilX可能启动菌毛组装;4)功能实验显示PilX缺失不影响HeLa细胞粘附,说明其特异性调控生物膜途径。
"Discussion"部分深入阐释了PilX作为"分子胶水"的双重功能:既是菌毛延伸的"种子",通过促进其他菌毛蛋白(pilin)聚合确保结构完整性;又是生物膜形成的"信号开关",可能通过识别唾液成分启动定植。这种精细分工解释了为何口腔链球菌能快速在牙齿表面"安营扎寨"。该研究不仅完善了革兰氏阳性菌菌毛组装理论,更为开发针对感染性心内膜炎的干预策略提供了新思路——针对PilX的抑制剂或可特异性阻断致病菌定植而不影响正常菌群。
值得注意的是,研究仍留下悬念:PilX识别的具体宿主分子尚未阐明,其与唾液蛋白α-淀粉酶(α-amylase)等因子的互作有待解析。正如作者在"Conclusions"强调,后续研究将聚焦PilX结合特异性,这将为开发"精准抗菌"疗法奠定基础。这项由Li Yixuan和Masanobu Nakata领衔的研究,通过多学科技术手段揭开了口腔病原菌狡猾的生存策略,为微生物感染防治提供了新的理论支点。
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