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CRISPR-Cas9体内筛选揭示亨廷顿病CAG重复不稳定的新型遗传修饰因子及其治疗潜力
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年01月23日 来源:Nature Genetics 31.8
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本研究针对亨廷顿病(Huntington's disease, HD)中驱动疾病进展的关键因素——体细胞HTT基因CAG重复扩展现象,通过创新性构建CRISPR-Cas9体内筛选平台,系统性鉴定了包括DNA错配修复(MMR)通路成员(MSH2/MSH3/MLH1/MLH3)、DNA聚合酶δ(POLδ)亚基及GWAS来源的疾病修饰基因(PMS1/PMS2)等新型调控因子,揭示了PMS1-MutLβ与MLH3-MutLγ在促进重复扩展中的非冗余功能,并首次发现FAN1-PMS2-MSH6的复杂调控网络,为开发靶向体细胞突变积累的疾病修饰疗法提供了全新靶点。
亨廷顿病作为典型的动态突变疾病,其发病机制与HTT基因中CAG三核苷酸重复序列的异常扩展密切相关。令人惊讶的是,这种重复序列在个体出生后仍会在特定组织(尤其是大脑纹状体)中持续积累,且扩展程度与疾病发病年龄直接相关。尽管已知DNA修复通路(特别是错配修复系统)参与调控这一过程,但传统基因敲除小鼠模型构建周期长、通量低,难以系统揭示复杂调控网络。更关键的是,不同DNA修复因子在体细胞突变中的相对贡献、组织特异性调控机制及其相互作用仍存在巨大知识空白,严重阻碍了靶向干预策略的开发。
为突破这些技术瓶颈,来自美国麻省总医院(Massachusetts General Hospital)和哈佛医学院的研究团队创新性地将CRISPR-Cas9基因编辑技术与AAV递送系统相结合,在亨廷顿病HttQ111 knock-in小鼠模型中建立了首个体内大规模遗传筛选平台。该研究通过系统性靶向134个候选基因(涵盖GWAS发现的疾病修饰位点、DNA修复通路成员及染色质调控因子),不仅验证了已知强效修饰因子(如MSH2/MSH3/MLH1/MLH3),更发现了POLδ亚基(POLD1/POLD2/POLD3/POLD4)作为促进重复扩展的核心机器,以及PMS1/PMS2这对功能相反的MutL复合物成员——前者通过未知机制增强扩展,后者则与FAN1协同抑制突变积累。
研究主要采用四大关键技术:
构建HttQ111-Cas9双转基因小鼠模型,实现组织特异性基因编辑;
优化AAV8(肝脏靶向)和PHP.eB(血脑屏障穿透型)载体递送系统,实现高效sgRNA递送;
开发基于毛细管电泳的CAG重复片段分析技术,定量检测体细胞突变水平;
建立深度测序(NGS)编辑效率评估体系,确保基因敲除有效性。
主要研究发现
验证CRISPR编辑平台的敏感性
通过靶向已知强效修饰因子(如敲除MSH2使肝脏扩展指数降低55%,而敲除FAN1使其增加40%),证实该平台可检测到与组成型敲除相当的效应。值得注意的是,肝脏中50-60%的移码突变率即可产生完全敲除表型,提示存在双等位基因编辑优势。
新型修饰因子的发现
在GWAS候选基因中,PMS1的敲除表现出与MSH2相当的抑制效果(扩展指数降低50%),而PMS2则呈现相反效应。DNA修复通路筛选中,POLδ所有四个亚基(POLD1/POLD2/POLD3/POLD4)的敲除均显著抑制扩展,支持其通过链置换合成(strand-displacement synthesis)参与重复序列整合的假说。
脑组织特异性验证
通过PHP.eB介导的脑靶向递送,在纹状体证实了PMS1/POLD1/POLD3的促扩展作用,且效应幅度与肝脏相当(24周时扩展指数变化达35-50%),但FAN1在肝脏中的促扩展效应在脑组织中未显现,提示组织特异性调控机制。
遗传互作网络解析
双基因敲除实验揭示:FAN1的扩展抑制功能完全依赖MLH1存在;PMS2与FAN1存在功能冗余;而MSH6的缺失会削弱FAN1/PMS2的抑制效果,暗示存在未知的MSH6依赖性调控因子。
机制模型与意义
研究提出创新性"稳态失衡"模型:CAG/CTG发夹结构被MutSβ(MSH2-MSH3)识别后,优先招募具有链特异性内切酶活性的MutLγ(MLH1-MLH3),导致新生链缺口产生;POLδ随后通过链置换合成将发夹结构整合为永久性扩展。该过程受到MutLα(MLH1-PMS2)和FAN1等因子的负调控,其平衡状态决定最终扩展概率。
这项研究的意义在于:
创建了可推广至其他重复扩展疾病的体内筛选范式;
将GWAS关联信号转化为功能证据(如PMS1/PMS2);
揭示POLδ作为新型治疗靶点,其抑制剂可能比MMR靶向药物更安全;
发现FAN1-PMS2-MSH6调控轴,为联合治疗策略提供理论基础。
论文中


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