叠氮化钠诱变创制燕麦突变体库:表型与遗传多样性特征解析及育种应用

【字体: 时间:2025年10月02日 来源:BMC Plant Biology 4.8

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  为解决燕麦遗传基础狭窄和育种材料匮乏问题,研究人员开展叠氮化钠(SA)化学诱变研究,系统评估了SA浓度与处理时间对发芽率、致死率的影响(LD50>10 mmol·L-1),从M2-M3群体中筛选出叶形、穗型、种子性状等6类突变体(最高突变频率23.73%),结合SSR标记揭示高多态性(PIC 0.27-0.80),为燕麦功能基因组学和育种提供宝贵资源。

  
燕麦作为全球重要的粮饲兼用作物,因其适应性强和营养价值高而备受青睐。然而,自花授粉特性与现代品种遗传基础狭窄严重限制了其育种突破。面对这一挑战,化学诱变技术成为拓宽遗传多样性的有效手段。其中,叠氮化钠(Sodium Azide, SA)作为一种高效化学诱变剂,能诱导A/T→G/C碱基置换,在多种作物中成功创制突变体库,但在燕麦尤其是饲用燕麦中的应用仍待深入探索。
为填补这一空白,Lin等人在《BMC Plant Biology》发表了最新研究,系统解析了SA诱导燕麦突变体的表型与遗传多样性特征。研究人员以两个燕麦品种(Everleaf和709)为材料,通过优化SA处理参数(浓度5-20 mmol·L-1,时间1-3小时),评估了发芽动态、幼苗生长抑制效应及致死率,进而通过多世代(M1-M3)田间表型筛选和SSR分子标记分析,揭示了突变谱系、遗传结构及育种潜力。
研究主要采用以下关键技术方法:
  1. 1.
    SA化学诱变处理:使用pH 3.0磷酸缓冲体系配制SA溶液,处理预浸种种子;
  2. 2.
    多世代田间筛选:从M1代测定农艺性状变异系数(CV),M2-M3系统鉴定突变类型;
  3. 3.
    SSR分子标记分析:筛选10对多态性引物,通过PCR、非变性PAGE电泳及基因分型技术,计算多态性信息含量(PIC)、遗传距离和群体结构(使用STRUCTURE、UPGMA和PCoA分析);
  4. 4.
    统计方法:采用ANOVA、Nei’s遗传多样性分析和AMOVA评估变异来源。
结果与发现
SA处理显著抑制发芽并诱导表型变异
高浓度SA(>10 mmol·L-1)导致发芽率急剧下降(致死率>60%),M1代农艺性状变异系数高达90.80%(主穗种子重量)。通过767个M2-M3突变体筛选,鉴定出6类突变表型,其中叶形变异最常见(1.02%),其次为种子性状(0.39%)。
突变体库涵盖多类型农艺性状变异
研究在Everleaf和709中分别获得405和61个稳定突变体,包括:
  • 叶部突变:皱缩叶、螺旋叶、宽叶、卷叶、直立旗叶等(图4B-N);
  • 株型与穗型变异:矮秆/高秆、早花/晚花、紧穗/散穗、单秆/多蘖(图5);
  • 种子性状突变:单粒/三粒小穗、白色/黑色种子、芒性变异(图6);
  • 多性状叠加突变:如矮秆+宽叶+穗型变化(图7)。
SSR标记揭示高遗传多样性
10对SSR引物检测到60-100%多态位点,PIC值0.27-0.80,等位基因数3-9个/位点。PCoA和UPGMA聚类将293份突变体分为4个遗传群组,AMOVA显示88%变异源于个体内。STRUCTURE分析确认Everleaf突变体遗传多样性更高(图9)。
结论与意义
该研究成功建立燕麦SA化学诱变技术体系,首次在饲用燕麦中创制了大规模、高多样性的突变体库。突变体涵盖叶片形态、株高、穗型、种子特性等多类型性状,且SSR标记证实了基因组水平变异,为燕麦功能基因挖掘(如芒发育、穗粒数调控)和育种提供了直接材料。其中低浓度SA(5 mmol·L-1)短时处理诱导突变效率最高,突破了传统LD50策略的局限。研究成果对解决燕麦遗传资源狭窄问题、加速性状改良具有重要实践意义,同时为其他禾谷类作物化学诱变研究提供了范式参考。
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