成人肿瘤患者自体造血干细胞移植后NK细胞亚群的动态演变及其临床意义

【字体: 时间:2025年10月08日 来源:Frontiers in Immunology 5.9

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  本研究深入探讨了自体造血干细胞移植(autoHSCT)后自然杀伤(NK)细胞的重建动态,揭示了移植后早期NK细胞短暂获得蜕膜样表型(CD56brightCD9+CD49a+)、呈现未成熟活化状态,并伴随抑制性受体(如LAIR-1、NKG2A)上调和活化受体(如2B4、CD160)下调。通过血浆细胞因子(IL-15/TGF-β/GDF-15)关联分析与体外功能实验,证实表型变化可调控NK细胞功能。非霍奇金淋巴瘤(NHL)患者中NK细胞成熟状态与无进展生存期显著相关,为优化肿瘤免疫治疗策略提供新见解。

  
引言
自然杀伤(NK)细胞通过直接杀伤靶细胞在肿瘤防御中发挥核心作用。人类循环NK细胞根据CD56和CD16表达分为功能差异的两大亚群:CD56brightCD16low/?亚群以产生大量免疫调节性细胞因子为主,CD56dimCD16+亚群则具有更强细胞毒性。NK细胞功能由激活性与抑制性受体(如KIRs、CD94/NKG2A)的信号平衡决定。自体造血干细胞移植(autoHSCT)是治疗多发性骨髓瘤(MM)、霍奇金淋巴瘤(HL)和非霍奇金淋巴瘤(NHL)的有效手段,早期免疫重建与改善预后密切相关,其中NK细胞作为移植后最先恢复的淋巴细胞亚群,其数量与临床结局显著相关。
材料与方法
研究纳入57例血液恶性肿瘤患者,在移植前(S1)、白细胞恢复期(约移植后12天,S2)及移植后30天(S3)、100天(S4)、180天(S5)和1年(S6)采集外周血样本。通过流式细胞术分析NK细胞表型(使用Panel 1-3标记物)和功能(Panel 4),采用UMAP和FlowSOM进行无监督聚类分析。通过ELISA和Luminex技术检测血浆IL-15、TGF-β和GDF-15水平,使用PCR-SSP进行KIR基因分型,并通过基于P815细胞的脱颗粒实验评估NK细胞功能。
结果
NK细胞数量与表型动态变化
移植后NK细胞绝对数在S2期显著下降,S3期开始恢复并持续至S6期。NK细胞在淋巴细胞中的比例保持稳定。表型分析显示:S2期CD56bright亚群比例上升而CD56dim下降,同时未成熟标记NKG2A+细胞增多,成熟标记CD57+细胞在S4-S5期才逐渐增加。共表达分析证实CD56dimNKG2A+CD57?为最主要未成熟亚群。
蜕膜样表型与活化状态
S2期NK细胞短暂获得蜕膜样表型:CD9、CD151、CD49a表达显著上调,其中CD9+CD151+群体增加4倍,且CD56表达强度最高。活化标记CD38、HLA-DR和CD26同步上调,抑制性受体CD31、LAIR-1和NKG2A表达增加,而活化受体CD160、NKG2C、CD229(2B4)表达下降。其他标记如CCR5和CD8在S2期上调,Siglec-7则下降。
无监督聚类分析
FlowSOM识别出8个NK细胞群体:Panel 1中Pop1(高表达NKG2A/CD31/CD9/CD56)在S2期显著增加;Panel 2中Pop3(低CD57/CD229/CD160,高CD26/CD55/HLA-DR/CD38/LAIR-1)在S2期上升,而Pop7(高CD160)下降。该结果验证了监督分析的可靠性。
细胞因子与表型关联
血浆IL-15和GDF-15水平在S2期显著升高,TGF-β则下降。IL-15浓度与CD55、HLA-DR和CD26表达呈正相关,TGF-β与LAIR-1表达负相关,提示细胞因子微环境调控NK细胞表型。
KIR表达模式
携带相应KIR基因的患者中,KIR3DL1、KIR2DL2/L3/S2、KIR2DL1和KIR2DS4在CD56bright亚群的表达于S2期短暂上升。KIR组合分析显示CD56bright亚群中表达1-3个KIR的细胞增加,未成熟CD56dimNKG2A+CD57?亚群的KIR表达亦在S2期上调。
临床意义与功能验证
在NHL患者中,S3期低频率未成熟NKG2A+CD57?或高频率成熟CD57+NK细胞与更优无进展生存期相关。GDF-15水平较低者亦显示更好生存趋势。功能实验表明S2期NK细胞CD16介导的脱颗粒能力下降,与LAIR-1上调呈负相关,提示抑制性受体过度表达可能削弱NK细胞毒性。
讨论
本研究系统揭示了autoHSCT后NK细胞向蜕膜样、未成熟活化表型的转化,其受体库向抑制性表型倾斜。IL-15可能驱动HLA-DR、CD26等活化标记表达,而LAIR-1上调可功能性地抑制CD16介导的杀伤作用。CD9+NK细胞扩增与细胞因子波动均为移植相关非肿瘤特异性现象。NHL患者中NK细胞成熟状态与生存期的关联为预后评估提供了潜在生物标志物,但需更大规模队列验证。GDF-15可能通过抑制淋巴细胞黏附影响免疫细胞浸润,其机制有待深入探索。这些发现为优化autoHSCT后免疫治疗策略提供了理论基础。
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