μCeta:一种用于环境DNA宏条形码技术的鲸类特异性引物组,实现非目标脊椎动物的最小扩增
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时间:2025年10月09日
来源:Environmental DNA 6.2
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本文开发并验证了新型鲸类特异性引物组μCeta,该引物靶向线粒体12S rRNA基因的267 bp区域,能高效检测鲸类环境DNA(eDNA),同时最大限度减少对非目标物种(如鱼类和人类)的扩增,为海洋生物多样性监测和鲸类保护提供了可靠、非侵入性的工具。
生物多样性监测对于理解和保护生态系统动态及物种分布至关重要,尤其是在人类活动和气候变化的影响下。鲸类作为海洋生态系统的关键指示物种,面临日益严重的人类活动威胁,因此迫切需要开发有效且非侵入性的监测方法。环境DNA(eDNA)分析作为一种新兴技术,通过从环境样本中提取DNA并进行宏条形码分析,能够同时检测多个物种,为水生和陆地环境中的生物多样性监测提供了高效、灵敏且成本低廉的方法。
鲸类包括所有鲸、海豚和鼠海豚物种,是海洋环境中的标志性大型动物,对海洋生态系统的功能和服务具有重要贡献,例如碳封存、营养循环和生态旅游。然而,许多鲸类物种受到人类活动和气候变化的严重威胁,超过四分之一的物种被列为受威胁物种。传统的监测方法,如视觉普查、声学调查和卫星图像分析,虽然提供了宝贵的数据,但往往成本高昂、劳动密集,且受天气条件和物种行为限制。因此,eDNA分析作为一种补充工具,具有显著优势,能够检测即使已经离开调查区域的鲸类,且无需直接与活体动物互动。
本研究旨在开发并验证鲸类特异性eDNA宏条形码引物组,以最小化非目标物种的扩增。首先,从公共数据库中检索了71种鲸类的线粒体基因组序列,以及牛、野猪、小鼠、猫、狗和人类等其他哺乳动物的线粒体基因组,用于评估引物的特异性。通过MAFFT在线工具进行序列比对,并利用DECIPHER包和手动检查设计了20个候选引物组,这些引物靶向12S rRNA、16S rRNA和NAD3基因区域。
在硅学评估中,使用USEARCH进行硅学PCR,分析引物组的预期扩增子长度、扩增物种数量以及区分近缘物种的能力。评估的关键指标包括引物与模板DNA的错配数量、扩增物种范围以及编辑距离计算。基于硅学评估结果,选择了四个引物组进行实证验证:Mu31F/Dc320R(后命名为μCeta)、Dc671F/Dc1015R、Mu2084F/Dc2438R和Mu9459F/Mu9822R。
实证验证分为两部分:首先使用从搁浅个体或水族馆获得的19种鲸类组织提取的DNA进行测试;其次,收集水族馆池水和香港沿海水域的海水样本,进行eDNA提取和宏条形码分析。水样使用Sterivex滤器过滤,DNA提取采用DNeasy Blood and Tissue试剂盒,并进行两轮PCR扩增和Illumina测序。序列数据处理使用DADA2进行ASV分析,并通过QCauto方法和BLAST搜索进行物种鉴定。
硅学评估显示,所有候选引物组均能有效扩增鲸类DNA,且与大多数鲸类序列的错配不超过一个。其中,μCeta引物组(Mu31F/Dc320R)在扩增鲸类DNA的同时,与人类DNA存在四个错配,与非目标脊椎动物(如鱼类、鸟类、爬行动物和两栖动物)的错配较多,表明其具有较低的扩增非目标物种的可能性。此外,μCeta的扩增子长度为267 bp,适合短读长测序,且具有较高的物种区分能力。
使用19种鲸类组织DNA进行实证验证,结果显示μCeta和Mu2084F/Dc2438R成功扩增了所有物种的DNA,而Dc671F/Dc1015R和Mu9459F/Mu9822R分别未能扩增一种和四种物种。Mu9459F/Mu9822R的扩增失败可能与其较高的简并碱基数量以及样本DNA降解有关。
在水族馆池水样本中,所有四个引物组均成功检测到了池中饲养的鲸类物种,如伪虎鲸(Pseudorca crassidens)和宽吻海豚(Tursiops truncatus)。μCeta引物组在物种鉴定方面表现最佳,能够为所有检测到的序列分配正确的物种名称,而其他引物组在某些情况下无法区分近缘物种,导致部分序列被标记为“未识别的海豚科”。
此外,检测到了某些非池中饲养的鲸类物种eDNA,这可能是由于水循环导致的eDNA迁移或来自饵料鱼的污染。这些结果强调了eDNA宏条形码技术的高灵敏度,同时也突出了在采样和实验过程中避免交叉污染的重要性。
在香港沿海水样的初步测试中,μCeta、Dc671F/Dc1015R和Mu9459F/Mu9822R几乎仅检测到鲸类eDNA,而Mu2084F/Dc2438R则扩增了大量非目标哺乳动物(如牛、猪和人类)的eDNA。与已报道的引物组(如MiMammal和Ceto2)相比,μCeta在特异性方面表现优异,能够最小化非目标物种的扩增。
在香港水域的实地应用中,μCeta引物组成功检测到了濒危物种中华白海豚(Sousa chinensis)的eDNA,样本采集位置距离观测个体约30米。两个海水样本中分别检测到了1,799,357和1,446,733条中华白海豚的序列读长,且未发现非鲸类eDNA,表明μCeta在自然环境中具有高灵敏度和特异性。此外,在香港东部水域的样本中还检测到了同样列为“易危”物种的印太江豚(Neophocaena phocaenoides)的eDNA。
尽管μCeta引物组在本次研究中表现优异,但其在更广泛鲸类物种和不同海洋环境中的适用性仍需进一步验证。一些鲸类物种(如亚马逊河豚Inia geoffrensis和弓头鲸Balaena mysticetus)与μCeta引物存在较多错配,可能影响扩增效率。未来研究应通过更多实地样本验证μCeta的全球适用性,并探索其与鱼类或其他海洋哺乳动物引物组的多重扩增应用,以提高监测效率。
此外,eDNA宏条形码技术目前无法直接提供物种丰度信息,但通过定量PCR(qPCR)或添加 spike-in DNA 的方法,可以估算eDNA浓度,作为物种丰度的间接指标。长读长测序技术的应用还可能实现基于种内变异的个体识别,从而直接估算个体数量。
本研究成功开发并验证了鲸类特异性引物组μCeta,该引物组在硅学和实证测试中均表现出高灵敏度、强物种区分能力和低非目标扩增率。在香港水域的实地应用中,μCeta成功检测到了中华白海豚和印太江豚的eDNA,证明了其作为非侵入性监测工具的有效性。μCeta的应用有望支持全球鲸类保护行动和海洋生态系统管理,未来需进一步扩大其验证范围和应用场景。
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