流感病毒NS1蛋白通过m6A修饰介导病毒mRNA剪接自调控的新机制
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时间:2025年10月12日
来源:Emerging Microbes & Infections 7.5
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本研究揭示了甲型流感病毒NS1蛋白通过N6-甲基腺苷(m6A)修饰自调控其mRNA剪接的表观遗传新机制。研究发现NS1通过动态调控m6A甲基化水平,招募阅读蛋白YTHDC1竞争性抑制剪接因子SRSF3结合,进而精细调控病毒复制效率。该保守的A385位点为广谱抗病毒药物研发提供了新靶点。
流感病毒NS1通过m6A修饰调控自身mRNA剪接的机制研究
甲型流感病毒复制需要未剪接和剪接病毒mRNA之间的精确平衡。本研究揭示了一种表观遗传策略:病毒NS1蛋白通过N6-甲基腺苷(m6A)修饰自调控其mRNA剪接。具体而言,NS mRNA上A385位点的m6A修饰招募m6A阅读蛋白YTHDC1,竞争性抑制剪接因子SRSF3结合邻近位点。重要的是,A385 m6A位点在人和禽流感毒株的NS片段中保守且对剪接调控至关重要。研究结果表明,NS1通过动态调控m6A水平来精细调节病毒mRNA加工以增强复制效率。
RNA转录后修饰在生物体中具有重要功能,其中N6-甲基腺苷(m6A)是最丰富的修饰类型。m6A修饰涉及甲基转移酶(writers)、去甲基化酶(erasers)和阅读蛋白(readers)等蛋白复合物。研究表明m6A修饰在病毒生命周期中发挥重要作用,但其在流感病毒中的具体调控机制尚不清楚。
甲型流感病毒NS1蛋白在病毒生命周期中发挥多重功能,但其在自身mRNA剪接调控中的作用存在争议。早期研究使用转染系统得出矛盾结论,而本研究通过构建新型突变病毒,在感染条件下系统研究NS1的调控功能。
本研究使用人胚胎肾293T细胞、人肺癌A549细胞、非洲绿猴肾上皮细胞(Vero)和鸡胚成纤维细胞(DF-1)等细胞系。通过反向遗传学技术构建WSN/Ans1突变病毒(在NS片段开放阅读框中引入两个终止密码子),该病毒可转录NS mRNA但不能翻译功能性NS1蛋白。
实验方法包括免疫共沉淀、Western blot、RNA荧光原位杂交、实时定量PCR、RNA免疫沉淀qPCR、纳米孔直接RNA测序等技术。使用特异性抗体检测病毒蛋白和m6A相关蛋白的表达和相互作用。
通过构建WSN/Ans1突变病毒,研究发现缺乏NS1蛋白显著抑制病毒在Vero细胞中的复制,在A549细胞中完全不能形成噬斑。感染实验显示,NS1缺失导致NEP/NS1比率增加,表明剪接效率提高。外源性NEP蛋白补充实验证实剪接改变与NEP缺乏无关,证明NS1自身负调控其mRNA剪接。
RNA pull-down和质谱分析发现m6A阅读蛋白YTHDC1与NS mRNA相互作用。YTHDC1敲除细胞中病毒复制减弱。m6A免疫沉淀实验证实NS mRNA存在m6A修饰,且NS1缺失显著影响修饰水平。
研究发现NS1通过负反馈机制调控m6A添加:低浓度NS1促进m6A修饰,高浓度则抑制修饰水平。免疫共沉淀显示NS1与甲基转移酶METTL3和去甲基化酶ALKBH5相互作用,其中METTL3结合随NS1浓度增加而显著减少,是主要调控机制。
通过改良的MeRIP-RT-qPCR和纳米孔直接RNA测序技术,精确定位A385为NS mRNA上的m6A修饰位点。构建A385C突变病毒证实该位点对m6A修饰和剪接调控至关重要。突变病毒复制能力减弱,剪接效率提高。
分析79,404条人源和禽源流感病毒序列,发现A385位点高度保守。在不同亚型毒株(H1N1、H3N2、H5N1、H9N2)中验证了m6A修饰的存在和功能保守性。A385C突变在所有毒株中均降低m6A水平并提高剪接比率,但在禽源毒株哺乳动物细胞感染中调控作用较弱,提示物种特异性调控。
YTHDC1敲除增加NS mRNA剪接比率,而SRSF3敲低降低剪接比率,表明二者在剪接调控中作用相反。RNA免疫沉淀实验显示,YTHDC1缺失或m6A修饰缺失增强SRSF3与NS mRNA结合,YTHDC1过表达则剂量依赖性抑制SRSF3结合。
通过精细定位发现SRSF3结合位点位于A385邻近的396-419bp区域。YTHDC1通过m6A修饰招募后,空间位阻抑制SRSF3结合其靶位点,从而抑制剪接。
本研究揭示了NS1通过m6A修饰自调控其mRNA剪接的新机制。NS1通过动态调控m6A水平维持NS1/NEP表达平衡,这对病毒复制至关重要。保守的A385位点功能为广谱抗病毒策略提供新靶点。
研究发现m6A修饰在禽源和哺乳动物源毒株中均调控剪接,但存在物种特异性差异,反映了病毒与宿主m6A系统的共进化。靶向该保守位点的治疗策略可能具有广谱性和高遗传屏障。
需要注意的是,本研究在癌细胞系中进行,未来需要在原代细胞和动物模型中验证机制。总之,该研究阐明了m6A修饰在流感病毒mRNA加工中的关键作用,为抗病毒治疗提供新思路。
Y.L.和B.W-Y.M.负责课题设计,Y.L.、B.W-Y.M.、P.W.和J.L.进行实验操作和数据分析,Y.L.和B.W-Y.M.撰写初稿,所有作者参与文稿修改。
研究获得香港特别行政区政府创新科技署、健康@InnoHK和研究资助局主题研究计划资助。感谢Jane Rayner博士协助文稿编辑,武汉贝纳基因科技有限公司完成纳米孔直接RNA测序。
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