新兴碳青霉烯耐药埃尔托型霍乱弧菌O1的基因组特征与传播风险研究
《Antimicrobial Agents and Chemotherapy》:Genomic portrayal of emerging carbapenem-resistant El Tor variant Vibrio cholerae O1
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时间:2025年10月18日
来源:Antimicrobial Agents and Chemotherapy 4.5
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本文系统揭示了印度古吉拉特地区分离的碳青霉烯耐药(CR)霍乱弧菌O1埃尔托变体的分子流行病学特征,发现其携带可水平传播的IncA/C型质粒(含blaNDM-1等耐药基因),凸显了耐药基因在肠杆菌科中扩散的潜在公共卫生危机。
碳青霉烯耐药(CR)肠病原体的流行对公共卫生管理和抗菌治疗构成严峻挑战。虽然碳青霉烯耐药在霍乱弧菌O1(VC)中罕见,但近期CR菌株的出现预示其耐药性(AMR)格局的重大转变。本研究旨在表征2019年印度古吉拉特霍乱患者中分离的新兴埃尔托型CRVC的耐药机制。通过Kirby-Bauer纸片扩散法和最低抑菌浓度(MIC)测定50株VC分离株的耐药表型,并结合全基因组测序(WGS)解析CR的分子基础。所有菌株均携带海地型高毒力等位基因(如ctxB、tcpA),且呈现典型多位点耐药(MDR)特征。值得注意的是,12%(6/50)的菌株对碳青霉烯及其他抗生素耐药。分子分析显示这些CR菌株为克隆相关,并携带一个142 kbp的IncA/C型接合型大质粒,其上聚集了blaNDM-1等AMR基因。该质粒可高效转移至大肠杆菌、副溶血弧菌、志贺氏菌等其他肠道病原体,并赋予受体菌与供体一致的耐药表型。质粒的水平基因转移(HGT)能力极大增加了CRVC扩散风险,可能严重冲击霍乱治疗方案。本研究强调需加强基因组监测和抗菌药物管理,以遏制CRVC传播。
霍乱仍是全球重大健康威胁,尤其在卫生条件差、人口密集及洪涝灾害频发地区。其致病主因为摄入被产毒型革兰阴性菌霍乱弧菌O1或O139污染的水或食物。历史上,古典生物型引发前六次霍乱大流行,而当前第七次大流行(7P)由1961年出现的埃尔托生物型主导。该型菌株通过表型和遗传变异增强毒力、耐药性及传播力,导致全球报告超53万病例及4000余死亡。近年来,VC O1对广谱抗菌药物(如氨苄西林、环丙沙星、四环素、大环内酯类、喹诺酮类、复方新诺明乃至碳青霉烯类)耐药性日益严重。多项研究指出MDR VC O1埃尔托型的出现与基因突变、可移动遗传元件(MGEs)获取及外排泵机制相关。2019年也门VC分离株对大环内酯类和三代头孢耐药,且与携带20 kb伪复合转座子的139 kbp IncC质粒相关,提示HGT的存在。过去十年中,VC对环境DNA(eDNA)的捕获能力及HGT特性使其成为ARGs的潜在储库。尽管碳青霉烯非霍乱首选药物,但VC中CR现象警示其可能通过质粒传播威胁其他肠道病原体治疗。
Phenotypic and molecular characterization of V. cholerae
所有VC分离株均为O1血清群Ogawa血清型,VP试验产乙酰甲基羧醇,血平板显示溶血性,与埃尔托参考株N16961一致,但对多黏菌素B(PB)敏感类似古典型O395。毒力基因谱显示均携带海地型高毒力等位基因(ctxB、tcpA、rtxA)。药敏试验显示多数菌株为MDR(耐3类以上药物),全部耐链霉素和复方新诺明,但对四环素、诺氟沙星、氧氟沙星、阿奇霉素、多西环素敏感。96%耐萘啶酸,氯霉素(76%)和环丙沙星(12%)敏感性降低。6株CRVC(AKM-1至AKM-6)对氨苄西林、头孢曲松、头孢噻肟、头孢他啶、庆大霉素、美罗培南耐药,其MIC值显著升高(美罗培南4–16 mg/L,氨苄西林、头孢曲松、庆大霉素均>256 mg/L)。PCR证实6株均携带blaNDM-1。
WGS显示CRVC属于ST-69型,基因组约4 Mb,GC含量47.6%。携带多种ARGs:β-内酰胺类耐药基因(blaNDM-1、blaCMY-6、blaDHA-7),氨基糖苷类耐药基因(strA、strB、rmtC、aac(6')-Ib3),磺胺类及甲氧苄啶耐药基因(sul1、sul2、dfrA1),氯霉素耐药基因(floR、catB9)。表型与基因型耐药高度一致,且ARGs多与MGEs(质粒、插入序列、转座子)关联。
Phylogenetic clustering of the CRVC in the global context
基于427株VC基因组的核心SNP系统发育分析显示,CRVC(AKM-1至AKM-6)形成独立簇,与印度既往菌株亲缘近。受体VC(AKM-7)及其接合子(AKM-8)虽聚为一支,但明显区别于CRVC簇,表明其遗传背景差异。接合实验未引起染色体SNP变异,提示质粒转移未立即引发宿主基因组适应性突变。
Characterization of the IncA/C plasmid carrying blaNDM-1
质粒pNDM-VC大小约142 kb,GC含量51.4%,含174个CDSs,属IncA/C ST-1型。其携带ARGs包括blaNDM-1、blaCMY-6、blaDHA-7、aph(3')-VI、aph(3")-Ib、aph(6)-Id、aac(6')-Ib3、rmtC、sul1、bleMBL。ARGs分布于两个区域:其一位于IS26与I类整合子3′保守序列间,含sul1至qacE基因簇及traGH接合转移基因;其二含blaCMY-6,侧翼为tnpA转座酶和IV型分泌系统(T4SS)基因簇。
Comparative analysis of IncA/C plasmids revealed a diverse genetic background for blaNDM-1
比较基因组显示pNDM-VC与大肠杆菌(KC999035)和VC(CP007636)质粒高度相似(99% identity)。不同VC质粒的ARGs组合差异显著,如部分携带ESBLs和AMEs但无blaNDM。blaNDM周边遗传环境在普罗威登斯菌、VC、大肠杆菌、克雷伯菌中高度保守,提示该元件在菌种间水平转移并稳定维持。
Transmission ability of the blaNDM-1-carrying IncA/C plasmid through conjugation
接合实验证实质粒可转移至所有测试受体(大肠杆菌J53、副溶血弧菌、志贺氏菌、VC O1、沙门氏菌)。接合子均获得对氨苄西林、头孢曲松、头孢噻肟、头孢他啶、美罗培南、庆大霉素耐药性,且质粒大小与供体一致。转移频率依次为:大肠杆菌J53(2.9 × 10?2)>副溶血弧菌(1.22 × 10?3)>志贺氏菌(2.35 × 10?4)>VC O1(1.4 × 10?5)>沙门氏菌(1.42 × 10?6)。
AMR的进化显著影响VC流行病学。埃尔托型VC通过获取MGEs发展为MDR甚至广泛耐药(XDR)病原体。2012年印度南部首次报道携带blaNDM-1的CRVC,此后CRVC在孟加拉国、尼日利亚、乌干达、南非等多地出现。本研究菌株呈现埃尔托生物型PB敏感表型,携带海地型毒力基因(ctxB7、tcpACIRS),且对四环素敏感,但CRVC通过IncA/C质粒获得碳青霉烯耐药性。系统发育证实CRVC为ST-69型克隆扩散,质粒接合未引起宿主基因组突变,但长期传代可能引发适应性进化。IncA/C质粒可逃逸CRISPR-Cas系统,进一步增强其持久性。CRVC的出现亟需通过基因组监测、抗菌药物管理及感染控制措施遏制其传播。
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