miR-ON-CRISPR:基于microRNA激活的CRISPR-dCas9系统在脓毒症基因治疗中的精准调控与应用

《Nucleic Acids Research》:MiR-ON-CRISPR: a microRNA-activated CRISPR–dCas9 system for precise gene therapy in living cells and mouse models of sepsis

【字体: 时间:2025年10月22日 来源:Nucleic Acids Research 13.1

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  本研究针对CRISPR-dCas9系统在基因治疗中存在的脱靶效应和细胞特异性不足等问题,开发了一种新型microRNA激活的CRISPR-dCas9双调控系统(miR-ON-CRISPR)。该系统通过内源性miRNA同时调控dCas9和sgRNA的表达,实现了对靶基因的精准激活。研究证实该系统可实时监测神经细胞分化状态,构建AND/OR逻辑门检测多重miRNA,并通过激活外源DTA基因或内源BAX基因实现细胞特异性杀伤。在脓毒症小鼠模型中,该系统通过激活Nrf2基因有效缓解了肝损伤、氧化应激和内质网应激。该研究为基因治疗提供了新的精准调控工具,具有重要的临床应用前景。

基因编辑技术的快速发展为疾病治疗带来了革命性突破,其中CRISPR-dCas9系统因其能够精准调控基因表达而备受关注。然而,传统的CRISPR系统存在明显的局限性:一方面,其活性难以精确控制,容易产生脱靶效应;另一方面,缺乏细胞特异性使得其在复杂生物环境中的应用受到限制。这些问题的存在严重制约了CRISPR技术在临床治疗中的安全性和有效性。
为了突破这些技术瓶颈,西安交通大学的研究团队在《Nucleic Acids Research》上发表了一项创新性研究,开发了一种名为miR-ON-CRISPR的新型基因调控系统。该系统巧妙利用内源性microRNA(miRNA)作为分子开关,实现了对CRISPR-dCas9系统的双重调控,为精准基因治疗提供了新的技术平台。
研究人员采用模块化设计思路,构建了一个包含三个核心组件的调控系统:表达LacI和pre-sgRNA的质粒、表达LacO2-dCas9-VPR的质粒以及含有报告基因的TRE-GOI质粒。该系统的工作原理十分精巧:在目标miRNA缺失的情况下,功能性sgRNA无法产生,同时LacI蛋白会抑制dCas9-VPR的表达,从而最大限度地降低系统的泄漏活性。而当目标miRNA存在时,miRNA通过结合靶位点介导LacI mRNA的降解,解除对dCas9-VPR的抑制,同时释放出功能性sgRNA,最终激活靶基因的表达。
主要技术方法
本研究采用分子克隆技术构建了miR-ON-CRISPR系统所需的各种质粒载体。通过细胞转染实验在HEK-293、HeLa、HCT-116和P19等多种细胞系中验证系统功能。利用荧光素酶报告基因检测系统活性,流式细胞术分析细胞凋亡,实时定量PCR(RT-qPCR)检测基因表达。建立LPS诱导的脓毒症小鼠模型,通过ELISA检测细胞因子水平,生化分析检测肝功能指标,组织染色观察病理变化。
系统设计与表征
研究团队首先分别构建了miRNA激活的dCas9系统(miR-ON-dCas9)和miRNA激活的sgRNA系统(miR-ON-sgRNA)。实验结果表明,这两种单调控系统均能响应特定的miRNA信号,但存在一定的泄漏表达。在此基础上,研究人员将两种调控机制整合,开发了双重调控的miR-ON-CRISPR系统。
通过系统的功能验证,miR-ON-CRISPR系统展现出优异的性能:仅对目标miRNA产生特异性响应,且泄漏活性显著低于单调控系统。研究人员还验证了该系统在不同细胞类型中的普适性,包括难以转染的C2C12成肌细胞,证明其具有良好的应用前景。
监测神经细胞分化
为了展示系统的实际应用价值,研究人员利用P19神经细胞分化模型,验证了miR-ON-CRISPR系统监测miR-124表达的能力。随着神经细胞分化进程的推进,系统中荧光素酶活性逐渐增强,成功实现了对细胞分化状态的实时成像。这一应用为研究细胞分化过程提供了新的技术手段。
逻辑门电路设计
考虑到复杂生物环境中往往需要整合多个miRNA信号,研究团队进一步开发了"OR/AND门控"miR-ON-CRISPR系统。通过将不同miRNA的响应模块 strategically地放置在LacI基因的5'-UTR和3'-UTR区域,成功构建了能够同时检测两种miRNA的逻辑门系统。这种设计大大增强了系统在复杂生物环境中的适用性。
细胞特异性杀伤应用
在功能应用方面,研究人员设计了能够激活外源DTA基因或内源BAX基因的miR-ON-CRISPR系统。实验结果表明,在表达高水平miR-21的HeLa和HCT-116细胞中,系统能够有效诱导细胞凋亡,而在不表达miR-21的HEK-293细胞中则不会引起明显的细胞毒性。这一应用为肿瘤等疾病的特异性治疗提供了新的思路。
脓毒症治疗应用
最后,研究团队在LPS诱导的脓毒症小鼠模型中验证了系统的治疗潜力。通过构建miR-155激活的Nrf2表达系统(miR155-ON-Nrf2),研究人员发现该系统能够有效缓解脓毒症引起的肝损伤。机制研究表明,Nrf2的激活能够上调抗氧化酶基因(NQO1、GCLM、HO-1)的表达,降低氧化应激水平,减轻内质网应激和肝细胞凋亡。
研究结论与意义
本研究开发的miR-ON-CRISPR系统代表了一种新型的基因调控工具,其双重调控机制确保了系统的高度特异性和低背景噪音。该系统不仅能够精确监测miRNA表达和细胞状态变化,还能实现细胞特异性的基因调控和治疗干预。在脓毒症治疗中的应用验证了其在疾病治疗中的巨大潜力。
该研究的创新之处在于将内源性miRNA信号与CRISPR技术有机结合,实现了对基因表达的多层次精准调控。这种模块化、可编程的设计思路为后续研究提供了重要借鉴。虽然目前系统仅能响应1-2种miRNA,但其技术框架为开发更复杂的多信号响应系统奠定了基础。
未来,随着载体技术的进步和组织特异性启动子的优化,miR-ON-CRISPR系统有望在更多疾病模型中展现其治疗价值。特别是对于癌症、遗传性疾病等需要精准治疗的领域,这种能够根据细胞内在特征自动激活的治疗系统具有独特的优势。该研究为基因治疗领域的发展提供了新的技术路径和思路,具有重要的科学意义和临床应用前景。

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