RGD修饰的葡聚糖甲基丙烯酸酯水凝胶搭载成骨肽和Mn3O4纳米酶通过免疫调节-成骨耦合策略促进骨缺损修复
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时间:2025年10月25日
来源:Materials Today Bio 10.2
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本研究针对骨缺损修复过程中过度活性氧(ROS)引发的剧烈炎症破坏巨噬细胞与骨髓间充质干细胞(BMSCs)等组织再生细胞间通讯、延缓愈合进程的难题,构建了RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4复合水凝胶。该水凝胶通过Mn3O4纳米酶清除ROS、诱导巨噬细胞M1向M2极化以调节免疫微环境,协同RGD序列促进细胞粘附增殖及DOPA-P24缓释诱导成骨分化,最终在体内显著加速骨缺损愈合,为骨组织工程提供了免疫调节与成骨协同的新策略。
由感染、创伤、肿瘤等原因造成的骨缺损,其临床治疗至今仍是一项重大挑战。当缺损达到一定程度时,人体的自愈能力十分有限,这不仅严重影响患者的生理功能,更给其心理健康带来巨大危害。在骨缺损区域,过量的活性氧(ROS)积累会引发剧烈的氧化应激损伤和强烈的炎症反应。这种异常的微环境会破坏巨噬细胞与骨髓间充质干细胞(BMSCs)、血管内皮细胞等关键再生细胞之间的正常通讯,严重阻碍血管生成和成骨过程,从而延迟甚至中断愈合进程。因此,通过基于生物材料的策略来调控免疫微环境,对于实现有效的骨愈合至关重要。
近年来,骨组织工程(BTE)发展迅速,其中水凝胶因其高孔隙率、类似细胞外基质的结构以及良好的药物负载能力而备受关注。然而,传统的骨修复支架功能往往较为单一,要么侧重于成骨诱导,要么侧重于机械支撑,难以应对骨愈合过程中复杂的生物学过程,特别是免疫微环境的调控。理想的骨修复材料应能同时促进细胞行为(如粘附、增殖)、诱导成骨分化,并有效调节局部免疫反应,从而为骨再生创造有利条件。
为了攻克这一难题,吉林大学的研究团队在《Materials Today Bio》上发表了一项创新性研究,他们成功构建了一种多功能复合水凝胶体系(RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4),旨在通过“免疫调节-成骨耦合”策略协同促进骨缺损愈合。该水凝胶以精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(RGD)序列修饰的葡聚糖甲基丙烯酸酯(DEXMA)为基质,共同负载了3,4-二羟基苯丙氨酸(DOPA)修饰的成骨肽P24(DOPA-P24)和锰氧化物(Mn3O4)纳米酶。
研究人员为开展此项研究,主要运用了以下几项关键技术方法:通过扫描电子显微镜(SEM)、傅里叶变换红外光谱(FTIR)、X射线衍射(XRD)和能谱分析(EDS)对材料进行形貌、结构和成分表征;通过体外降解实验和释放曲线测定评估水凝胶的降解性能及DOPA-P24、锰离子的释放行为;通过细胞计数试剂盒-8(CCK-8)实验、细胞活死染色、细胞骨架染色和溶血实验系统评估了水凝胶对巨噬细胞(RAW 264.7细胞)和大鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs)的细胞相容性、粘附及增殖影响;通过羟基自由基(•OH)和1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)清除实验、二氢乙锭(DHE)染色和2‘,7’-二氯二氢荧光素二乙酸酯(DCFH-DA)染色及流式细胞术,评估了材料的抗氧化应激能力;通过免疫荧光染色、实时定量聚合酶链反应(RT-qPCR)评估了材料对脂多糖(LPS)诱导的巨噬细胞极化(CD86/CD206标志物)及相关炎症因子(TNF-α, IL-1β, TGF-β, IL-10)表达的影响;通过Transwell实验、体外成管实验评估巨噬细胞条件培养基(MCM)对人脐静脉内皮细胞(HUVECs)血管生成的影响;通过碱性磷酸酶(ALP)活性分析、茜素红S(ARS)染色、RT-qPCR和蛋白质印迹(WB)评估了材料对BMSCs成骨分化的影响;最后,通过建立大鼠颅骨临界缺损模型,利用微型电子计算机断层扫描(Micro-CT)、苏木精-伊红(H&E)染色、Masson染色、免疫组织化学染色和免疫荧光染色,在体内综合评价了水凝胶的骨缺损修复效果及相关因子(TNF-α, IL-10, VEGF, CD31, OCN)的表达。
3.1. RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4水凝胶的合成与表征
研究人员通过405纳米紫外光照射DEXMA溶液30秒成功合成了水凝胶。扫描电镜显示水凝胶具有多孔结构,平均孔径为96.8 ± 21.8微米,有利于细胞粘附。傅里叶变换红外光谱证实了RGD的成功接枝以及DOPA-P24和Mn3O4的成功负载。元素面分布分析显示了碳、氮、氧、磷、锰元素的均匀分布,证实了功能组分的共存。X射线衍射分析确认了Mn3O4纳米酶为四方晶系结构。释放实验表明,DOPA修饰的P24(DOPA-P24)相较于未修饰的P24,从水凝胶中的释放行为更为缓慢持续,有利于长效成骨诱导。降解实验显示水凝胶在21天内可降解约85%。力学性能测试表明,RGD修饰以及Mn3O4的加入提升了水凝胶的压缩强度和模量。
通过细胞活死染色、CCK-8实验和溶血实验,确定了DOPA-P24和Mn3O4的安全工作浓度分别为200 μg/mL和100 μg/mL,并证实所有水凝胶均具有良好的生物相容性。细胞骨架染色和CCK-8实验进一步表明,RGD序列的引入显著促进了BMSCs的粘附和铺展,而含有DOPA-P24的水凝胶(RGD@DEXMA/DOPA-P24和RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4)则进一步增强了BMSCs的粘附面积和代谢活性,表明RGD和DOPA-P24在促进细胞行为方面具有协同作用。
通过•OH和DPPH自由基清除实验发现,RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4水凝胶表现出最高的自由基清除率(超过70%),这主要归功于Mn3O4纳米酶通过Mn2+/Mn3+氧化还原循环模拟过氧化氢酶(CAT)和超氧化物歧化酶(SOD)活性,以及DOPA部分中儿茶酚基团的抗氧化能力。在过氧化氢(H2O2)诱导的RAW 264.7巨噬细胞模型中,DHE染色和DCFH-DA染色(包括流式细胞术分析)均显示,该复合水凝胶能有效降低细胞内ROS水平,表明其具有显著的减轻氧化应激损伤的潜力。
为了评估水凝胶的免疫调节能力,研究人员检测了脂多糖(LPS)诱导的巨噬细胞表型极化。免疫荧光染色显示,与其它组相比,RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4水凝胶处理的巨噬细胞,其促炎M1型标志物CD86的表达面积显著降低,而抗炎M2型标志物CD206的表达则显著增加。RT-qPCR结果一致表明,该水凝胶能显著下调M1型相关基因(TNF-α, IL-1β)的表达,同时上调M2型相关基因(TGF-β, IL-10)的表达。此外,该水凝胶还能显著下调缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)的表达,这可能是通过清除ROS、改善缺氧微环境来实现的。这些结果证实了Mn3O4纳米酶能有效诱导巨噬细胞向M2型极化,从而缓解炎症。
研究进一步探讨了免疫调节对血管生成和成骨的影响。Transwell实验和体外成管实验表明,用RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4组巨噬细胞的条件培养基(MCM)处理人脐静脉内皮细胞(HUVECs)后,HUVECs的迁移能力和形成管状结构的能力(节点数)均最强,提示M2型巨噬细胞分泌的血管内皮生长因子(VEGF)等因子促进了血管生成。在成骨方面,ALP染色、ARS染色以及RT-qPCR和WB分析显示,该复合水凝胶处理组的BMSCs表现出最高的ALP活性、钙结节形成量以及成骨相关基因(RUNX-2, ALP, OCN, COL-I)和蛋白(RUNX-2, COL1a1)的表达水平。这表明由免疫调节创造的有利微环境与DOPA-P24的成骨诱导作用协同增强了BMSCs的成骨分化。
在大鼠颅骨临界缺损模型中植入水凝胶8周后,Micro-CT三维重建和骨体积分数(BV/TV)分析显示,RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4组的新骨形成量显著多于其他各组。H&E染色和Masson染色进一步证实,该组缺损处有大量新骨形成,胶原沉积丰富,骨小梁数量(Tb.N)和厚度(Tb.Th)也显著增加,接近假手术组水平。主要器官H&E染色和体内锰离子残留量检测表明Mn3O4纳米酶具有良好的生物安全性和代谢特性。
免疫组织化学染色显示,RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4水凝胶植入部位促炎因子TNF-α的阳性表达面积显著降低约80%,而抗炎因子IL-10的表达则增加了约400%,证实了其有效的体内免疫调节能力。免疫荧光染色表明,该水凝胶处理组的缺损区域血管生成标志物VEGF和CD31、以及成骨标志物OCN的表达均显著上调,与体外实验结果相互印证,说明其通过免疫调节协同促进了血管生成和成骨过程。
本研究成功构建了一种集细胞粘附增殖、成骨诱导和免疫调节多功能于一体的RGD@DEXMA/DOPA-P24/Mn3O4复合水凝胶。该水凝胶通过RGD序列和DOPA-P24协同促进BMSCs的粘附、增殖和成骨分化,并通过Mn3O4纳米酶有效清除ROS、诱导巨噬细胞M2型极化,从而改善缺损局部的免疫微环境,进而增强血管生成,最终在体内显著加速骨缺损愈合。这项工作揭示了通过“免疫调节-成骨耦合”策略促进骨再生的新途径,为开发下一代多功能骨组织工程支架提供了有前景的策略。尽管在走向临床转化的道路上仍面临大规模制备、成本控制等挑战,但本研究为解决复杂骨缺损修复难题提供了新的思路和实验依据。
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