PD-L1介导肺炎克雷伯菌感染巨噬细胞的抗原呈递与免疫调控机制研究

《Immunobiology》:Programmed cell death ligand 1 mediates antigen presentation, apoptosis, necrosis, and inflammatory response in Klebsiella pneumoniae-infected macrophages

【字体: 时间:2025年10月28日 来源:Immunobiology 2.3

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  本研究针对肺炎克雷伯菌(Kp)感染中PD-L1的免疫调控机制尚不明确的问题,通过构建Kp感染巨噬细胞模型及PD-L1敲低实验,发现PD-L1 knockdown可抑制巨噬细胞凋亡/坏死、增强吞噬功能并促进CD4+ T细胞活化,揭示了PD-L1通过调控抗原呈递(MHC II/CD80/CD86)和炎症因子(IL-1β/IL-6/TNF-α)介导Kp免疫逃逸的新机制,为抗Kp感染治疗提供了新靶点。

  
肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae, Kp)作为一种革兰氏阴性条件致病菌,不仅是社区获得性肺炎的主要元凶,更在免疫缺陷患者中引发高死亡率的侵袭性感染。随着高毒力肺炎克雷伯菌(hypervirulent Kp, hvKp)株系的出现和耐药性的蔓延,临床抗感染治疗面临严峻挑战。尽管既往研究多聚焦于Kp的耐药机制,但其如何逃逸宿主免疫清除的致病机制仍迷雾重重。尤其值得注意的是,在肿瘤免疫中扮演“刹车”角色的程序性死亡配体1(Programmed death-ligand 1, PD-L1),近年被发现可在细菌感染场景中异常高表达,提示其可能成为病原菌介导免疫抑制的“帮凶”。然而,PD-L1在Kp感染巨噬细胞过程中的具体功能及其对适应性免疫的调控作用,仍是未被深入探索的科学盲区。
为此,浙江大学医学院附属儿童医院重症监护病房团队在《Immunobiology》上发表研究,以经典Kp(classical Kp, cKp)和高毒力Kp(hvKp)感染小鼠单核巨噬细胞RAW264.7为模型,结合PD-L1基因敲低技术及Transwell共培养系统,首次系统揭示了PD-L1在Kp感染中调控巨噬细胞命运与CD4+ T细胞功能的多重作用。研究发现,Kp感染会显著上调巨噬细胞PD-L1表达,而抑制PD-L1不仅能降低细胞凋亡(表现为Bax、Cleaved Caspase 3下调)和坏死性凋亡(p-RIPK1/RIPK1、p-RIPK3/RIPK3、p-MLKL/MLKL下降),还可增强巨噬细胞对细菌的吞噬清除能力。更关键的是,PD-L1 knockdown逆转了Kp对巨噬细胞抗原呈递功能的抑制,显著提高MHC II、CD80、CD86表达水平,并促进共培养体系中CD4+ T细胞的活化(IFN-γ、TNF-α、IL-2分泌增加)并减少其凋亡。该研究从免疫调控新视角阐明了Kp感染中PD-L1的双刃剑角色,为靶向PD-1/PD-L1通路治疗耐药菌感染提供了理论依据。
在技术方法层面,作者首先通过PCR鉴定cKp(血清型K57)和hvKp(携带K2、rmpA、iroB毒力基因)菌株,并利用黏液粘度实验和荚膜多糖定量验证其表型差异。随后采用慢病毒shRNA转染构建PD-L1敲低的RAW264.7细胞株,通过qRT-PCR和Western blot验证敲低效率。研究通过流式细胞术、AO/EB染色及Western blot分析细胞凋亡/坏死指标;借助GFP标记菌株的荧光显微镜观察和FITC标记热灭活菌的流式 phagocytosis assay评估吞噬功能;通过ELISA和流式细胞术检测炎症因子(IL-1β、IL-6、TNF-α)及抗原呈递相关分子(MHC II、CD80、CD86);最后利用Transwell共培养模型分析巨噬细胞与CD4+ T细胞的互作。
3.1. 菌株鉴定与细胞转染
研究通过PCR扩增证实cKp不携带K2、rmpA、iroB基因,而hvKp呈阳性,且hvKp荚膜产量更高、黏液粘度更强。成功构建PD-L1敲低的RAW264.7细胞模型,转染后PD-L1 mRNA和蛋白表达显著下降。
3.2. PD-L1敲低减轻Kp感染巨噬细胞的凋亡和坏死
Kp感染显著升高PD-L1表达,而shPD-L1干预后,流式细胞术和AO/EB染色显示凋亡细胞比例下降,Western blot检测到凋亡标志物(Bax、Cleaved Caspase 3)及坏死标志物(p-RIPK1/RIPK1、p-RIPK3/RIPK3、p-MLKL/MLKL)表达降低,提示PD-L1促进Kp感染引发的细胞死亡。
3.3. PD-L1敲低增强巨噬细胞吞噬功能
通过GFP标记菌株的时序观察发现,shPD-L1组巨噬细胞数量减少幅度较小,且流式 phagocytosis assay显示其吞噬活性和吞噬指数显著提升。免疫荧光进一步证实细胞内Kp数量增加,表明PD-L1抑制巨噬细胞的细菌清除能力。
3.4. PD-L1敲低促进巨噬细胞活化与抗原呈递
ELISA检测发现shPD-L1组炎症因子IL-1β、IL-6、TNF-α水平进一步升高;流式细胞术显示MHC II阳性细胞比例上升,CD80、CD86表达增强,说明PD-L1敲低可逆转Kp对巨噬细胞抗原呈递功能的抑制。
3.5. PD-L1敲低通过巨噬细胞增强CD4+ T细胞活化
Transwell共培养实验表明,与PD-L1敲低巨噬细胞共育的CD4+ T细胞凋亡率下降,且IFN-γ、TNF-α、IL-2分泌量显著增加,证实PD-L1敲低通过改善抗原呈递促进T细胞免疫应答。
本研究结论鲜明地指出:Kp感染通过上调巨噬细胞PD-L1表达,不仅加剧细胞凋亡/坏死、抑制吞噬功能,更关键的是削弱其抗原呈递能力,导致CD4+ T细胞活化受阻,最终助力细菌免疫逃逸。值得注意的是,相比cKp,hvKp感染虽引发更强细胞毒性,但其诱导的炎症反应和抗原呈递抑制反而较弱,提示不同毒力株可能采取差异化免疫逃逸策略。尽管研究存在使用永生化细胞株、热灭活菌模拟吞噬等局限性,但其首次将PD-L1功能拓展至Kp感染场景,揭示了该分子在天然免疫与适应性免疫交叉调控中的枢纽作用。靶向PD-L1或许能打破Kp感染的免疫僵局,为多重耐药菌感染提供新的免疫治疗思路。
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