新抗原免疫原性特征的大规模Meta分析揭示癌症免疫治疗优化路径
《Cancer Immunology, Immunotherapy》:A meta-analysis of experimentally validated neo-epitopes: patterns, biases, and opportunities
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时间:2025年11月07日
来源:Cancer Immunology, Immunotherapy 4.6
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本研究针对肿瘤新抗原筛选标准不明确的难题,通过对CEDAR数据库中16,602个实验验证的新肽进行系统分析,揭示了驱动基因突变、HLA等位基因偏好性及氨基酸理化性质改变对新抗原免疫原性的关键影响,为个性化癌症免疫治疗提供了数据驱动的优化策略。
随着癌症免疫治疗的快速发展,靶向肿瘤特异性新抗原(neoantigen)已成为个性化治疗的核心策略。然而,如何从海量肿瘤突变中精准识别具有免疫原性的新表位(neo-epitope),仍是当前领域的重大挑战。既往研究多局限于小样本或计算预测,缺乏对实验验证数据的系统性评估。为此,由Alessandro Sette和Zeynep Kosaloglu-Yalcin领衔的研究团队,在《Cancer Immunology, Immunotherapy》发表了迄今最大规模的新抗原Meta分析,通过对超过16,000个新肽的20,601项T细胞实验数据进行整合,揭示了新抗原免疫原性的关键规律、现有研究偏见及临床转化机遇。
研究团队依托癌症表位数据库与分析资源(CEDAR),严格筛选了源自单核苷酸变异(SNV)且经患者自身T细胞验证的新肽数据,涵盖28种癌症类型、180项研究。通过定义“至少一次T细胞阳性反应即为新表位”的标准,发现13%的新肽具有免疫原性。为提升结果可靠性,团队还设置了“重复验证”子集(需至少3次实验且2次阳性),进一步验证了免疫原性新表位的稳定性。
研究通过CEDAR平台系统提取并标准化全球已发表的T细胞实验数据,重点分析新肽的癌症类型分布、宿主基因特征(如驱动基因状态、蛋白长度)、HLA限制性模式及氨基酸替换的理化性质变化。利用cBioPortal肿瘤基因组数据校正突变频率偏差,采用NetMHCpan预测HLA结合亲和力,并通过Fisher精确检验、Wilcoxon检验等统计方法评估富集趋势。
皮肤癌和肺癌的新表位阳性率最高(分别为17%和13%),而结直肠癌虽突变负荷高,阳性率仅6%。经突变频率标准化后,结直肠癌新表位比例升至39%,提示其低免疫原性可能源于突变数量稀释而非本质缺陷。冷肿瘤(如胆管癌、胰腺癌)虽突变负荷低,但部分新表位仍可激发T细胞应答,表明突变质量而非数量决定免疫原性。
TP53和KRAS等驱动基因衍生新肽的免疫原性显著高于非驱动基因(p<2.2×10?16)。尽管驱动基因编码的蛋白更长(中位长度866 vs. 585氨基酸),但小蛋白的新表位比例反而更高,表明驱动基因的克隆性及高表达可能是其富集关键。TP53热点突变(如R175H)被广泛研究,但多数突变仍缺乏实验验证,存在研究偏好。
尽管KRAS、NRAS、HRAS蛋白序列高度相似,但72个RAS新肽中仅1个(Q61R衍生肽)在KRAS与NRAS间共享,且未引发免疫应答。绝大多数新肽因序列微差异而缺乏交叉反应,对泛RAS免疫治疗策略提出挑战。
83%的实验聚焦HLA I类分子,但HLA II类呈现更高新表位比例(p=0.0001)。富集分析显示HLA-B40:01、HLA-C15:02和HLA-DRB1 * 11:01显著关联新表位,而HLA-A*02:01等常见等位基因反富集于非免疫原性新肽。新表位的HLA结合亲和力(EL%Rank<0.5)显著强于阴性肽(p<2.2×10?16),但突变与野生型肽的亲和力差异(DAI)无统计学意义。
酸性与碱性氨基酸互换(如E→K)、非芳香族向芳香族(如S→F)及非脂肪族向脂肪族(如H→L)的突变显著富集于新表位(p<0.01),提示疏水性增强及电荷改变提升免疫原性。反之,无理化性质变化的突变多与非免疫原性新肽相关。
本研究通过大规模数据整合,明确了驱动基因突变、HLA II类限制性及氨基酸理化性质改变作为新表位免疫原性的核心特征。同时揭露了当前研究对高频突变(如TP53热点)的过度聚焦、冷肿瘤中高质量新表位的潜在价值,以及实验方法(如IFN-γ ELISPOT主导)可能导致的免疫应答多样性低估。研究强调需拓展多 cytokine检测、平衡HLA等位基因覆盖,并关注非SNV来源新抗原(如移码突变)。CEDAR平台的持续完善将为新抗原优先级制定提供动态标准,推动癌症免疫治疗向精准化、高效化迈进。
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