虹鳟细胞系对PFOS和PFOA的细胞反应:对水生生态毒理学的启示

《EMC - Urología》:Cellular Responses to PFOS and PFOA in Rainbow Trout Cell Lines: Implications for Aquatic Ecotoxicology

【字体: 时间:2025年11月08日 来源:EMC - Urología

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  PFOS和PFOA通过剂量依赖性氧化应激、脂质过氧化及双通路凋亡诱导机制,显著抑制RTg-2和RTgill-W1细胞活力,其中鳃上皮细胞(RTgill-W1)对PFAS更敏感,呈现MAPK信号通路差异激活特征。

  PFAS,即全氟和多氟烷基物质,是一类广泛应用于工业和日常产品中的合成氟化化学品。这些物质因其独特的化学性质而被广泛使用,包括其在水中的稳定性、对水的亲和力以及生物累积能力。然而,这些特性也使得PFAS成为全球关注的污染物,因为它们在环境中的持久性、生物累积性以及对生态系统的潜在危害。本研究聚焦于两种重要的PFAS——全氟辛烷磺酸(PFOS)和全氟辛酸(PFOA),并探讨它们在两种虹鳟鱼细胞系(RTg-2和RTgill-W1)中的细胞毒性及氧化应激反应,旨在揭示这些化学物质对鱼类细胞的潜在影响机制。

PFOS和PFOA因其高产量、化学稳定性以及环境持久性而成为PFAS研究的重点。它们的碳-氟键具有极高的稳定性,使得它们在自然环境中难以降解,从而容易在水体中积累并影响水生生物。尽管国际社会已经采取措施限制这些物质的使用,如《斯德哥尔摩公约》中的相关条款,但PFOS和PFOA仍然在全球范围内被检测到,这主要是由于历史污染和某些地区的持续使用。PFAS在水体中的广泛分布不仅影响了水生生物的健康,还通过食物链传递,对人类健康构成潜在威胁。

在水生生态系统中,PFAS的累积可能对鱼类的生理功能造成严重影响。例如,鱼类的鳃和生殖系统是PFAS接触和积累的关键部位。鳃作为鱼类与水体直接接触的器官,负责气体交换和离子调节,因此容易受到水溶性污染物的影响。而生殖系统则与生物累积和遗传毒性密切相关。研究中提到的两种虹鳟鱼细胞系——RTg-2(来源于性腺组织)和RTgill-W1(来源于鳃上皮组织)——分别代表了鱼类敏感的生殖和呼吸系统。通过比较这两种细胞系对PFOS和PFOA的反应,可以更全面地理解PFAS对鱼类不同组织的影响。

研究结果显示,PFOS和PFOA在两种细胞系中均表现出浓度依赖性的细胞毒性效应。在24小时暴露后,细胞活力显著下降,且随着浓度的增加,这种下降趋势更加明显。特别是在高浓度(30 mg/L)下,细胞活力的下降尤为显著。此外,两种化合物均能引起细胞内活性氧(ROS)的积累,这是氧化应激的一个重要指标。ROS水平的上升可能破坏细胞内的氧化还原平衡,进而影响细胞功能。在RTgill-W1细胞中,ROS的积累更为显著,这可能与鳃上皮细胞的高代谢活性和更强的氧化应激反应能力有关。

在抗氧化防御机制方面,PFOS和PFOA的暴露引起了抗氧化酶(如超氧化物歧化酶SOD、过氧化氢酶CAT、谷胱甘肽过氧化物酶GPx、谷胱甘肽还原酶GR和谷胱甘肽-S-转移酶GST)的活动变化。研究发现,SOD、CAT和GR的表达水平在暴露后显著上升,而GPx和GST则被抑制。这种抗氧化系统的调节可能反映了细胞对氧化应激的初始应对机制,即通过增强抗氧化酶的活性来对抗ROS的积累。然而,当暴露浓度进一步增加时,这种补偿机制可能被突破,导致GSH(谷胱甘肽)的耗竭和脂质过氧化的加剧。脂质过氧化的增加可以通过测量丙二醛(MDA)的含量来评估,结果表明PFOS和PFOA在高浓度下均显著提高了MDA水平,这表明它们对细胞膜造成了破坏。

此外,PFOS和PFOA还能够诱导细胞凋亡,这一过程通过多种途径实现。研究中通过检测caspase-3、caspase-8和caspase-9的活性,发现两种化合物均能够激活这些关键的凋亡相关酶。caspase-8主要参与外源性凋亡途径,而caspase-9则与内源性凋亡途径相关。caspase-3作为执行性凋亡酶,负责细胞结构蛋白的切割,最终导致细胞死亡。在RTgill-W1细胞中,凋亡信号的激活更为迅速和强烈,这可能与鳃上皮细胞的高敏感性有关。

MAPK(丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶)信号通路的激活也被观察到,特别是在暴露后,ERK和p38的磷酸化水平显著增加。MAPK通路在细胞应激反应中起着关键作用,包括细胞增殖、分化、炎症反应和凋亡等。研究结果表明,PFOS和PFOA通过激活这些信号通路,进一步加剧了细胞的应激反应和凋亡过程。这种通路的激活与氧化应激之间存在紧密联系,说明氧化损伤可能是触发细胞凋亡的关键因素之一。

从研究设计的角度来看,实验中使用的PFOS和PFOA浓度(1–30 mg/L)远高于自然水体中通常检测到的水平(通常为ng/L至低μg/L)。这种高浓度的暴露设计旨在揭示细胞毒性机制,而不是模拟真实的环境暴露情况。尽管如此,这种方法在机制毒理学中是常见的,通过使用超环境剂量,可以更清晰地观察到细胞应激反应和分子靶点的激活情况。这些发现有助于理解PFAS在低剂量慢性暴露下的潜在影响,为未来的体内研究和生态风险评估提供基础。

研究还发现,PFOS和PFOA在两种细胞系中的作用存在差异。例如,PFOA通常比PFOS诱导更强的氧化应激和凋亡效应,这可能与其分子结构有关。PFOA的羧酸基团使其具有较高的亲水性,可能更容易穿透细胞膜和线粒体膜,从而直接干扰线粒体功能和ROS生成。相比之下,PFOS的磺酸基团可能使其与细胞膜脂质和蛋白质有更强的相互作用,导致更缓慢但持续的氧化应激反应。这种差异在MAPK信号通路的激活中也有所体现,PFOA在较高浓度下显示出更持续的ERK和p38磷酸化,而PFOS则表现出延迟或双相的激活模式。

从生态学角度来看,这些细胞反应可能对鱼类的生存和种群动态产生重要影响。例如,鳃上皮细胞的损伤可能导致气体交换障碍和渗透调节功能的下降,进而影响鱼类的生存能力。而生殖细胞的损伤可能影响鱼类的繁殖能力,降低种群的繁衍效率。因此,PFAS的累积可能对水生生态系统造成深远影响,包括生物多样性的下降和生态平衡的破坏。

此外,研究还强调了在评估PFAS毒性时考虑组织来源和细胞类型的重要性。不同的细胞系可能对同一化学物质表现出不同的反应模式,这反映了其在生理功能和代谢能力上的差异。因此,在进行生态毒理学研究时,选择与目标组织相关的细胞模型是至关重要的,以确保研究结果的准确性和适用性。

综上所述,本研究揭示了PFOS和PFOA对虹鳟鱼细胞系的毒性机制,强调了氧化应激和凋亡在其中的核心作用。同时,研究还指出了不同细胞类型对PFAS的敏感性差异,以及MAPK信号通路在细胞应激反应中的关键地位。这些发现不仅有助于理解PFAS对水生生物的潜在危害,还为制定更有效的环境监测和监管策略提供了科学依据。未来的研究应进一步探索新兴PFAS及其替代品的毒性机制,并结合体内实验,以更全面地评估这些物质对生态系统的影响。
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