近年来,双特异性抗体在生物技术领域发挥了重要作用,其多样的结构形式使其在诊疗领域具有广泛的应用前景。由于能够同时靶向两种不同的分子,双特异性抗体比传统单克隆抗体具有更高的精确度和疗效。例如,在癌症治疗中,双特异性抗体可以同时作用于肿瘤细胞和免疫效应细胞,从而增强免疫介导的肿瘤细胞杀伤作用[[1], [2], [3]]。
为了构建异二聚体,人们广泛采用了“凸起插入孔洞”(KiH)策略。这一模型最初由Crick在1952年提出,Genentech团队对此技术进行了深入的优化和应用[[4], [5], [6]]。该方法包括对一个重链(HC)进行改造,使其包含一个“凸起”(战略性放置的较大残基),而另一个互补的重链则包含一个“孔洞”(可容纳该凸起的空腔)。凸起与孔洞之间的空间和电静力互补性促进了选择性异二聚体的形成,同时最大限度地减少了同二聚体的生成。重要的是,KiH设计保留了抗原结合能力和Fc功能,从而提高了生产效率和产品纯度——这些都是工业规模生产和临床应用的高标准要求[[5], [6], [7], [8]]。
目前的KiH抗体生产依赖于稳定表达、瞬时表达或体外组装。早期方法是在大肠杆菌(E. coli)中分别表达凸起和孔洞重链片段,随后通过纯化、热变性及重新折叠来形成KiH异二聚体。最近,CHO细胞系统(治疗性抗体生产的黄金标准)也被广泛应用。在瞬时转染过程中,凸起和孔洞重链共同表达,以同二聚体或单体形式分泌,然后在氧化还原条件下(例如谷胱甘肽[GSH]催化)进行体外组装,以促进链间二硫键的形成[[9], [10], [11]]。
尽管KiH技术取得了成功,但在纯化和组装过程中仍会产生同二聚体杂质(如凸起-凸起或孔洞-孔洞对)。这种现象可能是由于结构互补性驱动的异二聚化引起的,其中凸起和孔洞片段通过形状匹配、电荷互补性、氢键作用以及疏水效应相互作用,二硫键进一步稳定了二聚体结构[5,12]。
在本研究中,我们观察到混合含有凸起相关(凸起-凸起)和孔洞相关(孔洞-孔洞)杂质的细胞培养液(HCCF)后,虽然iCIEF、SDS-Caliper NR和SEC-UPLC分析表明形成了看似符合KiH构型的结构,但进一步分析发现这些并不是真正的KiH结构。
这种伪KiH现象可能是由于结构互补性驱动的相互作用(包括形状匹配、电荷互补性、氢键作用和疏水效应)以及二硫键的稳定作用造成的[10]。这种误导可能会严重影响对纯化工艺开发的判断,因为这些伪KiH分子可能逃避标准分析方法的检测,同时无法发挥真正的KiH功能。
目前常用的纯化策略首先是亲和色谱(AC),随后进行两个精处理步骤以去除聚集物和同二聚体杂质。然而,AC存在一些局限性,如洗脱条件苛刻且产率较低。对于阴离子交换色谱(AEX),其结合-洗脱模式的载量能力非常低(15–40 g/L树脂)。一些研究通过使用添加剂等方式优化了混合模式洗脱条件,从而提高了抗体纯度[[13], [14], [15], [16], [17]]。
在本研究中,我们进一步评估了各种杂质去除策略,发现AC效果不佳。相比之下,基于POROS XS的CEX色谱通过利用pH依赖的电荷差异成功分离了凸起相关(凸起-凸起)和孔洞相关(孔洞-孔洞)杂质。这种方法不仅有效去除了杂质,还允许CEX在流动模式(FT)下运行,实现了高达300 g/L树脂的载量能力,从而显著节省了树脂成本。