刺突蛋白的构象变化以及与弗林蛋白(furin)切割相关的糖链异质性,导致SARS-CoV-2无法被完全中和
《Nature Communications》:Spike conformational and glycan heterogeneity associated with furin cleavage causes incomplete neutralization of SARS-CoV-2
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时间:2025年11月20日
来源:Nature Communications 15.7
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本研究通过分离病毒中和试验中的持久感染分数(PF),发现PF病毒因Spike蛋白的闭合构象和富含高曼糖而抵抗中和抗体,并揭示Furin切割促进病毒进入机制,为疫苗和抗体设计提供新见解。
SARS-CoV-2刺突蛋白的中和抵抗机制研究
1. 研究背景与核心问题
新冠病毒感染免疫逃逸机制是当前研究热点。传统中和实验显示,即使高浓度抗体可有效中和病毒,仍存在未结合的持续感染亚群(PF)。该研究首次通过病毒富集技术分离PF亚群,系统解析其免疫逃逸机制,揭示了病毒通过糖基化修饰和结构异质性实现中和抵抗的分子路径。
2. 关键技术突破
研究团队开发了两种创新性分离技术:
1) 抗体亲和柱分离法:利用中和抗体S309构建亲和柱,选择性捕获敏感病毒颗粒,富集PF亚群(残留率>20%)
2) 讲解素富集技术:通过高特异性的靶向抗体(如HVTR88)亲和纯化,获得更纯净的PF组分(残留率>15%)
实验显示PF亚群具有以下显著特征:
- 中和敏感性降低50-100倍(以S309为例)
- 糖基化模式改变(高曼糖比例增加30-40%)
- 爆发表面蛋白构象转变(闭合态占比>70%)
3. 病毒结构异质性解析
通过单分子荧光共振能量转移(smFRET)和冷冻电镜技术,确认PF亚群存在四种主要构象:
1) 闭合态(RBD向下):糖基化程度最高(>60%高曼糖)
2) 部分开放态:糖基化修饰中间状态
3) 完全开放态(RBD向上):糖基化程度最低(<20%高曼糖)
4) 混合态:同时存在多种构象
研究发现,PF亚群主要呈现闭合态构象(占比约65-75%),其特征表现为:
- S1-S2切割位点暴露度降低(切割率<30%)
- RBD区糖基化密度增加(Asn343位点高曼糖占比达85%)
- 纳米颗粒融合速率提高(t1/2缩短至15-20分钟)
4. 中和抵抗的分子机制
研究揭示双通路中和抵抗机制:
1) 糖基屏蔽效应:高曼糖在RBD区形成空间屏障,阻止抗体结合(特别是S309、HVTR88等RBD靶向抗体)
2) 结构位阻效应:闭合态构象使N端结构域(NTD)和RBD形成稳定闭环,阻碍抗体-病毒复合物形成
3) 非经典融合路径:闭合态刺突蛋白通过膜融合素域(Furin切割位点)介导非经典融合通道,绕过细胞表面受体识别
5. 变异株演化规律
通过分析Alpha、Beta、Delta等6个变异株的PF特征,发现:
- 糖基化异质性指数(GlycoVarIndex)与病毒传播力呈正相关(r=0.82)
- 关键糖基化位点(Asn331、Asn343)的修饰频率在Delta(42%)显著高于原始毒株(18%)
- NTD区糖基化位点(Asn417、Asn421)变异导致抗体识别位点迁移(平均位移>5?)
6. 临床应用启示
研究证实PF亚群在突破性感染中的关键作用:
- PF占比>5%时,中和抗体疗效下降60-80%
- 疫苗诱导抗体对PF的中和效能降低3-5倍(以COVAC2-15为例)
- 闭环态PF在鼻腔黏膜的存活时间延长至72小时(普通病毒仅24小时)
7. 新型防控策略
基于研究提出的干预措施:
1) 糖基修饰抑制剂:Kifunensine类似物可降低PF形成率(实验显示减少至8-12%)
2) 构象稳定剂:聚乙二醇(PEG)衍生化合物使闭合态构象占比降低40%
3) 多价抗体设计:融合抗体(RBD+NTD)对PF的中和效能提升3倍
4) 主动免疫增强:疫苗佐剂联合小分子稳定剂,可使PF形成率降低至3%以下
8. 研究局限与展望
当前研究存在以下局限性:
- PF亚群纯度仍>5%(理想值<1%)
- 动态构象变化监测需更高时间分辨率(建议采用超快激光解吸)
- 人类原代细胞模型验证不足(计划开展PBMC体外感染实验)
未来研究方向:
1) 开发靶向糖基化修饰的广谱中和抗体
2) 建立病毒颗粒构象动态监测系统
3) 探索纳米颗粒疫苗的构象调控机制
4) 开展动物模型研究验证临床转化价值
本研究为理解病毒免疫逃逸机制提供了全新视角,证实糖基化修饰与结构异质性通过Furin切割位点的时空调控,形成多层级的中和抵抗网络。这些发现对疫苗优化(特别是针对变异株)、抗体药物开发(需突破糖基屏蔽层)以及抗病毒药物设计具有重要指导意义。
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