基于体外肿瘤细胞杀伤与细胞因子释放预测CD3 T细胞双特异性抗体CRS风险的回顾性研究
《The AAPS Journal》:Leveraging in vitro Tumor Cell Killing and Cytokine Release to Predict Cytokine Release Syndrome Associated with CD3 T-cell Bispecifics in Oncology: a Retrospective Analysis
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时间:2025年11月21日
来源:The AAPS Journal 5.0
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【编辑推荐】CD3 T细胞双特异性抗体(TCB)的临床开发因细胞因子释放综合征(CRS)风险而受限。本研究通过回顾性分析8种TCB的临床前数据,首次发现当首次给药后Cmax超过体外最敏感肿瘤细胞杀伤EC50的25倍(即96%最大效应)时才会触发CRS。该阈值可为优化首次人体(FIH)剂量选择提供依据,推动临床开发加速。
在肿瘤免疫治疗领域,CD3 T细胞双特异性抗体(TCB)犹如一把"双刃剑"——通过同时结合肿瘤抗原和T细胞表面的CD3受体,能有效激活T细胞杀伤肿瘤,但同时也可能引发危及生命的细胞因子释放综合征(CRS)。目前临床开发面临的核心困境在于:缺乏从临床前数据预测CRS的有效方法,导致首次人体(FIH)试验往往采用过度保守的剂量策略。以莫舒努单抗(mosunetuzumab)为例,其起始剂量比最终获批剂量低1000倍,这意味着大量患者可能在无效剂量下接受治疗,既延误病情又拖慢研发进程。
《The AAPS Journal》最新发表的这项研究针对这一瓶颈问题展开突破性探索。罗氏制药的Apolline Lefevre领衔的研究团队创新性地对8种结构相似的IgG1样TCB(包括已获批的格洛菲塔单抗和福米塔米格等)进行系统性回顾分析,首次建立基于体外肿瘤细胞杀伤实验的CRS预测阈值,为优化临床剂量策略提供科学依据。
研究采用多维度技术方法整合分析:首先收集8种TCB的体外药效学数据,包括传统体外实验(肿瘤细胞系+健康供者PBMC)和体外实验(患者来源肿瘤细胞+自体T细胞)的肿瘤细胞杀伤EC50,以及细胞因子释放检测数据;同时提取首次静脉给药后的临床药代动力学参数(Cmax、Tmax、AUC等)和CRS分级(ASTCT标准);通过浓度-效应归一化分析建立暴露-反应关系,并探讨靶介导药物处置(TMDD)与肿瘤负荷的关联性。
研究揭示不同TCB的肿瘤细胞杀伤效力存在显著差异,EC50跨度达5个数量级(4.6×10-5 nM至22 nM)。值得注意的是,体外实验(细胞系)的灵敏度始终高于体外实验(患者来源材料),且同一分子在不同实验条件下的EC50波动可达30倍以上。细胞因子释放EC50同样呈现高度变异,但与肿瘤杀伤效力显著相关(相关系数0.89),提示两者生物学通路的一致性。
单纯的血药浓度与CRS严重程度无明确关联,但经最敏感体外杀伤EC50归一化后,规律浮出水面:当Cmax/EC50比值低于25倍(对应96%最大效应)时,所有患者均未出现CRS;超过该阈值后,1-3级CRS均可发生,但严重程度与比值无直接梯度关系。相比之下,细胞因子释放EC50归一化未能建立明确阈值,可能与检测细胞因子种类不一及CRS机制复杂性有关。
分析显示,基于体外最小预期生物效应水平(MABEL)的起始剂量始终安全但过于保守,而基于体外MABEL的剂量则可能过早触发CRS。例如福米塔米格在0.2倍体外MABEL浓度即出现CRS。采用25倍EC50阈值可显著缩小FIH剂量与预期治疗剂量(ATD)的差距,提升研发效率。
对异常病例的追踪发现,某些低暴露量却发生CRS的患者呈现典型的TMDD药代动力学特征:清除加速、Cmax降低,且多伴随高肿瘤负荷(如福米塔米格患者sBCMA>1500 ng/mL)。这印证了CRS与靶点介导的药理活性间的本质关联,也提示高肿瘤负荷患者需加强CRS监测。
本研究首次确立体外肿瘤细胞杀伤EC50在TCB的CRS预测中的核心地位,提出的25倍阈值原则为FIH剂量选择提供量化标准。这一发现不仅证实CRS是药理活性的"伴随现象",更推动肿瘤免疫治疗从"经验性保守"向"数据驱动优化"转变。值得注意的是,该方法对不同靶点(血液瘤/实体瘤)、不同格式(2+1/1+1)的TCB均显示适用性,如莫舒努单抗(1+1格式)的临床数据也符合该规律。研究者特别强调应通过多条件体外实验(不同细胞系、E:T比率)模拟临床异质性,为个体化剂量探索提供空间。随着FDA逐步推动新方法方法(NAMs)替代动物试验,这种基于体外数据的量化策略将更具普适价值。该研究为加速创新免疫疗法临床转化提供关键方法论支撑,有望使更多患者尽早获益于前沿肿瘤免疫治疗。
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