使用血小板裂解液进行造血干细胞和前体细胞的体外培养:研究其增殖情况以及对红细胞系和巨核细胞系的影响

《Blood Cells, Molecules, and Diseases》:Ex vivo culture of hematopoietic stem and progenitor cells with platelet lysate: Investigating proliferation and erythroid-megakaryocytic lineage effects

【字体: 时间:2025年11月22日 来源:Blood Cells, Molecules, and Diseases 2.1

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  本研究探讨人血小板裂解物(HPL)对外周血造血干细胞(HSPCs)增殖及红系-巨核系分化的影响,发现HPL能显著促进HSPCs增殖并缩短其人口倍增时间,同时保持红系和巨核系分化的稳定。

  本文探讨了人类血小板裂解物(HPL)在体外培养造血干细胞和祖细胞(HSPCs)中的作用,旨在优化HSPC的培养条件,以提高其在临床和研究中的应用价值。HSPCs因其自我更新和分化能力,成为治疗血液系统恶性肿瘤、免疫缺陷和遗传性疾病的重要工具。然而,当前的培养方法主要依赖于胎牛血清(FBS),这种依赖性带来了伦理争议、动物源性污染风险以及批次间差异等问题,从而限制了HSPCs的广泛应用。

为了克服这些挑战,研究者们正在寻找更加安全、标准化的替代品。HPL作为一种富含生长因子和细胞因子的物质,被认为是一个有潜力的替代方案。它来源于激活的血小板浓缩物,不含动物源性成分,因此具有更高的安全性。HPL中包含多种关键成分,如血小板衍生生长因子-AB(PDGF-AB)、转化生长因子-β(TGF-β)、表皮生长因子(EGF)、胰岛素样生长因子-1(IGF-1)、碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)以及趋化因子如基质细胞衍生因子-1(SDF-1)。这些成分共同作用,为HSPCs提供类似体内微环境的条件,从而促进其生长和分化。

研究中,HSPCs是从健康供体的外周血中分离得到的,通过G-CSF动员后进行采集。分离后的细胞经过磁珠分选技术(MACS)进一步纯化,以确保其具有足够的纯度和活性。为了评估HPL对HSPCs的影响,研究团队在对照组(无血清培养基)和HPL补充组(含10% HPL)中分别培养HSPCs,并在培养第7天进行细胞计数、活性检测以及群体倍增时间(PDT)的测定。结果显示,HPL显著提高了HSPCs的增殖能力,使其在7天内增殖倍数达到1.96倍,同时缩短了PDT。这表明HPL在促进HSPCs生长方面具有明显优势。

为了进一步验证HPL对HSPCs分化能力的影响,研究团队使用定量聚合酶链式反应(qPCR)和流式细胞术(flow cytometry)对红系和巨核系分化进行了评估。结果表明,HPL促进了红系分化,增加了β-珠蛋白的表达,而其他与红细胞相关的基因表达则保持稳定。此外,流式细胞术检测发现,CD71标记物的表达水平有所下降,但整体红细胞数量未受影响。这提示HPL可能通过调控某些关键标记物的表达来影响红细胞的分化过程,而不会显著改变红细胞的总体数量。

在巨核系分化方面,研究发现HPL并未显著改变相关标记物和基因的表达水平。这表明HPL在促进HSPCs增殖的同时,不会对其向巨核系分化造成不利影响。进一步的集落形成实验(CFC assays)也证实了HPL能够维持HSPCs的多向分化能力,使其能够形成多种血细胞类型的集落。这些结果支持了HPL在体外培养HSPCs中的应用潜力。

研究还指出,HPL不仅能够提高HSPCs的增殖效率,还能在一定程度上保持其功能完整性。与FBS相比,HPL在促进细胞生长和分化方面表现出更优的性能,同时避免了动物源性成分带来的潜在风险。此外,HPL的使用有助于实现更加标准化和可扩展的培养体系,这对于基因治疗和再生医学等领域的应用至关重要。

研究的局限性在于其样本量较小,且仅限于健康供体的外周血HSPCs。因此,未来的研究需要进一步扩大样本规模,并探索HPL在不同疾病状态下的应用效果。此外,研究还应关注HPL在长期培养中的稳定性以及其对HSPCs表型和功能的影响。虽然HPL在短期内表现出良好的效果,但其在长期培养中的表现仍需进一步验证。

总的来说,HPL作为一种新型的培养基补充剂,具有替代FBS的潜力。其丰富的生长因子和细胞因子不仅能够促进HSPCs的增殖,还能在一定程度上维持其分化能力。研究结果表明,HPL在优化HSPC培养条件方面具有重要的应用价值,尤其是在需要高纯度、功能完整的HSPCs的临床和研究领域。随着对HPL研究的深入,未来有望开发出更加高效、安全的HSPC培养方法,从而推动其在再生医学和基因治疗中的广泛应用。
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