针对这一难题,由Eric M. Cramer和Tamara Lopez-Vidal等研究人员组成的团队在《Cell Reports Methods》上发表了他们的最新研究成果。他们开发了一种名为TRACE-QC(Temporal Reassignment and Correspondence Evaluation with Quality Control)的创新算法,专门用于评估数据完整性并校正三维细胞培养时序成像中的错误标记问题。研究团队首先通过实验验证了问题的普遍性。他们将不同比例的肿瘤细胞(Panc10.05)与癌症相关成纤维细胞(CAF,hT231细胞系)混合生成肿瘤球体,将其嵌入胶原混合物中,并在0、24、48、72和168小时时间点进行成像。结果发现,在12个培养孔中,有9个孔至少有一个球体在实验过程中发生了显著位移,这表明位置偏移在长期球体培养实验中相当常见。值得注意的是,进一步分析显示,球体位移与肿瘤-CAF比例无显著关联,且位移组和静态组的球体侵袭性(通过复杂度测量)在所有时间点均无统计学差异。这一发现表明基质位移并未改变实验的生物学条件,为后续计算校正提供了重要前提。TRACE-QC算法的核心创新在于将基于排列的优化与普氏分析(Procrustes Analysis)相结合。该方法仅利用图像元数据中的X和Y坐标信息,通过两个关键步骤实现球体图像的准确匹配:首先通过排列优化确定最佳球体对应关系,然后通过普氏分析进行几何对齐,校正全局培养孔旋转和平移以及局部球体运动。
在模拟数据验证中,TRACE-QC表现出色。研究人员通过105,000次模拟实验测试了算法在不同位移水平下的性能,并引入了归一化Frechét距离作为质量评估指标。当归一化Frechét距离为1.0时,算法准确率可达约90%,为实际应用提供了明确的质控阈值。与现有方法(如TrackMate的线性分配算法、Crocker-Grier算法以及排序对应空间SCS)的对比实验中,TRACE-QC在球体跟踪和匹配任务中表现优异,尤其在处理全局旋转、平移和局部位移组合场景时具有明显优势。关键技术方法包括:利用图像元数据提取球体坐标信息;通过排列优化算法确定球体对应关系;应用普氏分析进行几何变换;使用归一化Frechét距离进行质量评估;基于人胰腺组织样本来源的CAF细胞系(hT231)与肿瘤细胞系(Panc10.05)共培养模型;通过微SAM(Segment Anything for Microscopy)和napari平台进行图像分割分析。