MCT1/4介导的衣康酸跨膜转运调控巨噬细胞抗沙门氏菌感染的新机制
《Nature Communications》:Itaconate transport across the plasma membrane and Salmonella-containing vacuole via MCT1/4 modulates macrophage antibacterial activity
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时间:2025年11月27日
来源:Nature Communications 15.7
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本研究针对细菌感染过程中关键免疫代谢物衣康酸(itaconate)的跨膜转运机制这一前沿科学问题,揭示了单羧酸转运蛋白MCT1和MCT4在质膜和沙门氏菌容纳泡(SCV)上双向转运衣康酸的重要功能。研究发现,抑制MCT1/4可增加细胞内衣康酸浓度,增强其对SCV内沙门氏菌的靶向性,从而显著抑制细菌复制。该研究不仅阐明了衣康酸空间分布调控的分子基础,更为开发基于衣康酸的抗感染治疗策略提供了新思路。
在细菌感染的战场上,巨噬细胞作为机体的重要防线,会迅速启动一系列代谢重编程来对抗入侵者。其中,衣康酸(itaconate)作为一种重要的免疫代谢物,近年来备受关注。当巨噬细胞感知到细菌感染时,其三羧酸循环(TCA cycle)会在异柠檬酸脱氢酶1(IDH1)处发生中断,导致顺乌头酸(cis-aconitate)积累,进而被免疫应答基因1(IRG1,也称为乌头酸脱羧酶1,ACOD1)催化脱羧生成衣康酸。这种代谢物不仅能够通过"衣康酰化"(itaconation)修饰蛋白质,更被证实具有直接的抗菌活性。
然而,科学界对衣康酸如何在细胞内"精准投递"以发挥其抗菌作用的机制了解甚少。特别是衣康酸如何跨越质膜实现细胞内外转运,以及如何被运送到细菌藏身的"特制牢笼"——沙门氏菌容纳泡(Salmonella-containing vacuole, SCV)中,这些关键科学问题一直悬而未决。虽然近期有研究发现ABCG2可以作为衣康酸的输出泵,但这一发现并不能完全解释衣康酸的分泌过程,提示存在其他转运机制。理解衣康酸的转运机制,对于开发针对耐药菌感染的新治疗策略具有重要意义。
在这项发表于《Nature Communications》的研究中,研究人员通过系统的实验设计,发现单羧酸转运蛋白MCT1(SLC16A1)和MCT4(SLC16A3)是衣康酸的关键双向转运蛋白。研究表明,抑制MCT1和MCT4的转运活性能够显著增强巨噬细胞对沙门氏菌的清除能力,这一效应依赖于内源性衣康酸的生成。通过构建基因敲除细胞系,研究人员证实MCT1和MCT4的功能缺失会导致细胞内衣康酸积累,增加衣康酸靶向的沙门氏菌比例,从而抑制细菌复制。
为了探究MCT1/4介导衣康酸转运的直接证据,研究团队采用了多种技术方法:利用非洲爪蟾卵母细胞异源表达系统进行转运分析;构建蛋白脂质体(proteoliposomes)验证直接转运功能;开发基于生物传感器的衣康酸检测方法;应用液相色谱-质谱联用(LC-MS)技术进行代谢物定量分析;采用免疫共沉淀(co-immunoprecipitation)研究蛋白质相互作用;通过细胞成像技术分析蛋白质定位。研究中使用了来自健康捐献者的单核细胞来源的巨噬细胞(hMDM)以及基因工程小鼠模型。
MCT1和MCT4转运活性的抑制增强抗沙门氏菌感染能力
研究发现,沙门氏菌感染后,衣康酸在巨噬细胞胞质中积累并随后被分泌到细胞外。当使用MCT1和MCT4的双重抑制剂Su3118(Syrosingopine)或MCT1抑制剂AZD3965与MCT4抑制剂VB124联合处理时,沙门氏菌在RAW264.7细胞、树突状细胞和人类巨噬细胞中的存活均受到显著抑制。重要的是,这种抗菌效应在Irg1缺陷的细胞或小鼠中消失,表明MCT1/4的抗菌作用依赖于衣康酸的生成。
抑制MCT1和MCT4转运活性促进衣康酸靶向沙门氏菌
研究人员发现MCT1和MCT4定位于巨噬细胞的质膜上。通过非靶向代谢组学分析,发现抑制MCT1和MCT4后,细胞内衣康酸水平显著升高。利用衣康酸生物传感器,研究显示在MCT1/4活性被抑制的细胞中,更多沙门氏菌被衣康酸靶向。这种效应在感染后期尤为明显,与衣康酸分泌增加的时间点相符。
研究团队开发了基于生物传感器的衣康酸分泌检测方法,发现抑制MCT1/4可显著减少衣康酸的分泌。在稳定表达IRG1的HEK 293T细胞中,过表达MCT1和MCT4降低了细胞内衣康酸水平,同时增加了上清中的衣康酸含量。在Mct1-/-Mct4-/-双敲除的RAW264.7细胞中,也观察到类似的细胞内衣康酸积累和分泌减少现象。
研究表明MCT1/4也能介导细胞外衣康酸的摄取。在Irg1-/-细胞或HeLa细胞中,MCT1/4抑制剂显著抑制了衣康酸的摄入。利用13C标记的衣康酸实验证实,Su3118以剂量依赖的方式抑制衣康酸的摄取。研究还发现衣康酸与乳酸、琥珀酸和丙酮酸等MCT1/4的底物存在竞争性转运关系。
衣康酸是一种二羧酸,具有两种电离状态(HITA和ITA2-)。研究发现酸性pH条件促进衣康酸的转运,表明衣康酸主要以单羧酸形式(HITA-)通过MCT1/4进行转运。细菌感染引起的细胞内酸化可能促进了衣康酸向单羧酸形式的转化,从而影响其转运效率。
在非洲爪蟾卵母细胞和脂质体中验证MCT1/4的衣康酸转运功能
通过非洲爪蟾卵母细胞异源表达系统,研究人员证实表达重组MCT1或MCT4的卵母细胞对衣康酸的摄取增强。此外,将纯化的人MCT1或MCT4蛋白重构至蛋白脂质体中,发现含有野生型MCT1或MCT4的脂质体能够有效转运衣康酸,而突变型则无此功能,为MCT1/4直接转运衣康酸提供了直接证据。
研究发现MCT1和MCT4不仅定位于质膜,也招募至SCV。抑制MCT1/4后,被MCT1/4包裹的沙门氏菌比例增加,且这些细菌更易被衣康酸靶向。大多数被MCT1/4包围的沙门氏菌同时被衣康酸靶向,表明MCT1/4在SCV水平介导衣康酸的转运。
MCT1和MCT4依赖的衣康酸向SCV转运受RAB32促进
研究发现MCT1/4与RAB32存在相互作用,且沙门氏菌可被RAB32和MCT1/4共同包裹。对于不能中和RAB32-衣康酸抗菌效应的沙门氏菌突变株(△GtgE△SopD2),MCT1/4的招募减少,表明RAB32参与调控MCT1/4依赖的衣康酸转运。
本研究系统阐明了MCT1和MCT4在衣康酸双向转运中的核心作用,揭示了这些转运蛋白在质膜和SCV两个关键位点调控衣康酸空间分布的分子机制。研究发现,MCT1/4不仅介导衣康酸的细胞分泌,也参与其向SCV的靶向递送,而这一过程受RAB32的精细调控。在感染早期,衣康酸主要通过MCT1/4被转运至SCV,直接作用于胞内细菌;随着感染持续,多余的衣康酸则通过MCT1/4分泌至细胞外。抑制MCT1/4功能可提高细胞内衣康酸水平,增强其对SCV内沙门氏菌的靶向性,从而有效抑制细菌复制。
该研究不仅深化了对免疫代谢物转运机制的理解,还将代谢转运蛋白MCT1/4与抗菌免疫紧密联系起来,为代谢免疫领域提供了重要见解。鉴于MCT1和MCT4是公认的药物靶点,本研究为开发基于衣康酸的抗感染治疗策略提供了新思路,尤其是在抗生素耐药性问题日益严峻的背景下,MCT1/4抑制剂(如Su3118、VB124+AZD3965)的抗菌特性显示出广阔的转化应用前景。
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