RAD51 D-loop结构揭示真核生物链交换机制:从DNA弯曲到碱基对打开的逐步过程
《Nature Communications》:RAD51 D-loop structures reveal the mechanism of eukaryotic RAD51-mediated strand exchange
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时间:2025年12月02日
来源:Nature Communications 15.7
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本研究针对真核生物同源重组中RAD51介导的链交换机制不明确的问题,通过冷冻电镜技术捕获了五个关键中间体结构,结合分子动力学模拟,揭示了由N端结构域(NTD)引导的DNA逐步弯曲、L2环插入促进链分离以及S2位点稳定产物的空间协同机制,为理解DNA修复提供了重要结构基础。
当DNA双链断裂这种致命损伤出现在细胞中时,同源重组(Homologous Recombination, HR)便扮演起基因组"修复师"的关键角色。在这一精密修复过程中,RAD51重组酶介导的链交换(strand exchange)反应是核心步骤:RAD51首先在单链DNA(ssDNA)上形成称为突触前纤丝(presynaptic filament)的螺旋结构,然后寻找同源的双链DNA(dsDNA),并催化入侵单链与互补链配对,形成经典的D-loop结构。然而,真核生物RAD51究竟如何巧妙地解开坚硬的DNA双螺旋,并实现精确的链交换,这一分子机制长期以来是领域内悬而未决的谜题。
与原核生物RecA不同,RAD51缺乏负责招募dsDNA的C端结构域(CTD),取而代之的是一个进化上保守的66个残基的N端结构域(NTD)。尽管生化研究表明NTD参与dsDNA结合,但其如何与距离较远的L2环(loop L2)协同作用来 destabilize( destabilize)同源dsDNA,一直缺乏直接的结构证据。传统的螺旋重建冷冻电镜技术虽然成功解析了RAD51突触前和突触后纤丝的整体结构,但由于D-loop的形成只发生在特定的原体(protomer)上,破坏了螺旋对称性,使得对称平均方法无法捕捉到D-loop形成的动态细节。
为了攻克这一难题,来自中央研究院和台湾大学的研究团队在《Nature Communications》上发表了最新研究成果。他们巧妙地利用RAD51-SEAD(S208E/A209D)双突变体,该突变体保留了野生型的纤丝形成和链交换活性,但在冷冻电镜样品制备的短时间内倾向于形成包含约9个原体的迷你纤丝(mini-filament),从而绕过了长纤丝对单颗粒分析的制约。研究人员设计了多种含有部分错配"气泡"(bubble)的dsDNA底物,成功地捕获了从dsDNA招募到D-loop形成的五个关键中间态结构,分辨率最高达2.91 ?。结合分子动力学(Molecular Dynamics, MD)模拟,他们首次清晰地描绘了RAD51介导链交换的逐步机制。
本研究主要运用了以下几种关键技术方法:研究人员利用小鼠RAD51-SEAD突变体在体外组装与ssDNA和dsDNA结合的迷你纤丝,通过冷冻电镜单颗粒分析技术解析了多个复合物结构。他们设计了系列含有不同长度错配区的DNA底物以捕获反应中间体,并进行了全原子分子动力学模拟以动态追踪DNA构象变化。此外,还通过基于结构的点突变(如P83G, K284A, R306A)结合电泳迁移率变动分析(EMSA)和链交换/D-loop形成实验,验证了关键结构域的功能。
研究首先证实,RAD51-SEAD突变体形成的迷你纤丝在结构上与通过螺旋重建解析的野生型RAD51长纤丝高度一致(均方根偏差RMSD分别为0.93 ?和1.04 ?),并且其体外链交换活性与野生型相当。这为后续基于迷你纤丝的结构研究提供了可靠基础。
通过系统测试二十多种含有不同错配气泡的dsDNA底物,研究人员成功解析了五个代表不同反应阶段的冷冻电镜结构:
- 1.4-bp错配复合物(分辨率4.53 ?):展示了dsDNA通过两个相邻NTD(N+1, N+2)非特异性结合的早期招募状态,dsDNA尚未弯曲。
- 2.8-bp错配复合物(分辨率3.23 ?):dsDNA呈现明显弯曲,与四个相邻NTD(N+1至N+4)相互作用,代表了dsDNA被招募后的构象变化。
- 3.8-bp错配(靠近5'端)D-loop复合物(分辨率3.91 ?):首次观察到清晰的异源双链(heteroduplex)形成,涉及5'端1又1/3个碱基对三联体(base-pair triplet)的配对。
- 4.8-bp错配(靠近3'端)D-loop复合物(分辨率3.2 ?):异源双链配对扩展至2又2/3个三联体。
- 5.12-bp错配D-loop复合物(分辨率3.42 ?):异源双链进一步扩展,涉及1/3-3-2/3个三联体,跨越五个原体。
分子动力学模拟将这些静态结构串联成一个动态过程,揭示了反应的时间序列。
对8-bp错配(靠近5'端)D-loop复合物的高分辨率结构分析揭示了精细的分子相互作用:
- •NTD引导DNA弯曲:dsDNA与NTDN+1、NTDN+2和NTDN+4上的Lys64和Lys70结合,向位于原体N+5的链交换位点(site I)弯曲。这种结合导致NTDN+1相对于未结合状态旋转了6.4°。
- •L2环插入防止重退火:来自L2环的疏水残基Met278N+6、Phe279N+6、Met278N+7和Phe279N+7插入到新分离的链之间,物理上阻止了dsDNA的重新退火(reannealing)。
- •S2位点稳定置换链:带正电荷的S2位点(site II)残基,包括Arg306N+7、Lys304N+7、Arg303N+7、Arg130N+7和Lys284N+6,通过静电相互作用稳定被置换的链(displaced strand)。
- •Arg235的构象变化:通常用于划分碱基对三联体的Arg235N+6在此处向外旋转,与新分离的互补链相互作用,提示其除了划分单元外,还可能引导互补链走向交换位点。
通过分析靠近3'端的8-bp和12-bp错配D-loop结构,研究人员观察到了异源双链沿纤丝轴(从3'端向5'端)的传播过程。在12-bp错配复合物中,12个核苷酸(5'-G19-G30)在原体N+3至N+7的site I处形成了异源双链。同样观察到L2环残基的插入、S2位点对置换链的稳定,以及在链分离点附近的π-π堆叠(如Phe279N+7与核苷酸T19)和静电相互作用。比较不同中间体发现,Arg235的构象以及3'倾斜双链(3'-tilted duplex)与NTD的接触方式存在可变性,表明局部重排以调节配对传播。研究还确认,8个核苷酸(8-nt)的微同源性(microhomology)是稳定D-loop形成的最小单位,短于此时互补链无法形成稳定的异源双链。
MD模拟为冷冻电镜观察到的静态图像提供了动态验证:
- •D-loop起始:模拟显示,被NTDN+1和NTDN+2招募的B型dsDNA会被吸引向靠近ssDNA结合位点的带正电荷通道,并与NTDN+3相互作用,导致dsDNA轻微弯曲(约170°)。随后,3'倾斜双链与带正电荷的L2环N+7和Arg303-Arg306环N+7发生瞬时相互作用,使弯曲加剧至约140°,并导致第一个碱基对在L2环附近打开。之后,3'倾斜双链由于空间限制绕过NTDN+4,与NTDN+5结合,角度偏转约120°,这与图2c观察到的构象高度吻合。
- •D-loop传播:模拟以图2d结构为起点,将3'倾斜双链改为更稳定的G:C碱基对。模拟显示,3'倾斜双链从NTDN+4解离,并向上平移9.7°。与L2环N+7和Arg303-Arg306环N+7/N+8的带正电荷区域结合,使得互补链接近site IN+6,导致G31碱基对断裂。这表明链交换通过从结合的NTD解离和与Arg303-Arg306环结合这一重复机制逐步向下一个原体传播。
为了验证NTD、L2环和Arg303-Arg306片段的功能,研究人员构建了P83G(扰动NTD运动)、K284A(影响L2环正电性)和R306A(影响S2位点)突变体。虽然这些突变对ssDNA结合亲和力影响较小,但在DNA饱和结合条件下,它们均表现出持续的链交换活性降低。更重要的是,当使用完全同源的dsDNA底物时,突变体的活性缺陷明显,而使用含有12-bp错配气泡(预分离)的dsDNA底物时,其活性可被部分挽救(约增加50%),而野生型活性变化不大。这有力地证明了NTD、L2环和Arg303-Arg306片段在链分离过程中的特异性作用。
本研究通过解析RAD51介导链交换途径中的五个关键中间体结构,并结合分子动力学模拟,提出了一个空间和时间上协同的逐步机制模型。该模型的核心在于:保守的NTD负责招募并弯曲dsDNA;dsDNA的弯曲引入局部机械应变, destabilize 碱基配对;随后,带正电荷的L2环和Arg303-Arg306区域进一步诱导弯曲和局部碱基对打开;L2环的疏水残基(Met278/Phe279)插入分离的链间防止重退火;同时,S2位点捕获并稳定置换链,从而将互补链递送到链交换位点进行同源配对。
与RecA机制相比,RAD51的独特之处在于:RecA的CTD结合dsDNA后与L2环产生空间冲突,直接导致L2插入和链打开。而在RAD51中,NTD首先从3'倾斜双链解离,使dsDNA重新定位至L2环和Arg303-Arg306的正电表面,进而诱导弯曲和链打开。尽管域的使用不同,但RAD51和RecA的D-loop几何结构,特别是5'倾斜双链附近,惊人地保守。主要区别在于3'倾斜双链部分,RAD51中的3'倾斜双链比RecA多了一个约60°的外向扭转,导致其与RAD51 N+3原体的NTD相互作用,而RecA中与N+4原体的CTD相互作用。
研究还明确证实了链交换沿入侵ssDNA的3'到5'方向进行,这与许多生化研究结论一致,但与近期另一项基于人RAD51 D-loop冷冻电镜结构研究提出的5'到3'极性相反,表明仍需进一步的实验验证。
总之,这项研究首次提供了真核生物RAD51介导链交换的连续动态结构视图,详细阐明了从dsDNA招募、弯曲、碱基对 destabilize、链分离到置换链稳定的全过程。这些发现不仅深化了对同源重组分子机制的理解,也为研究与DNA修复缺陷相关的疾病(如癌症)以及开发相关治疗策略提供了重要的结构基础。
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