缺氧相关的circARSB调节脂质代谢和先天免疫系统的相互作用,从而影响肝细胞癌中对免疫检查点抑制剂的反应
《Cancer Letters》:Hypoxia-Related CircARSB Modulates Lipid Metabolism and Innate Immune Crosstalk to Influence Immune Checkpoint Inhibitor Response in Hepatocellular Carcinoma
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时间:2025年12月06日
来源:Cancer Letters 10.1
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该研究通过单细胞测序和全转录组测序发现肝癌中CircARSB在免疫检查点抑制剂(ICIs)响应者中显著上调,其机制涉及缺氧诱导的细胞可塑性调控脂代谢与血管生成,并通过AAV递送实现肿瘤微环境重塑,临床开发基于MRI的模型指导个性化治疗。
肝癌免疫治疗响应异质性机制研究取得突破性进展
肝癌作为全球第三大癌症相关死亡原因,其治疗响应存在显著个体差异。最新研究揭示了肿瘤微环境中缺氧调控的环状RNA CircARSB在决定免疫检查点抑制剂(ICIs)疗效中的关键作用。该研究通过整合单细胞测序、全转录组测序和动物模型,首次系统阐释了肿瘤异质性驱动治疗响应分化的分子机制。
研究团队发现,肝癌组织中存在10种具有显著代谢特征和免疫表型的细胞亚群。在响应组别中,亚群C2表现出独特的脂质代谢特征和强效的先天免疫激活状态,而耐药组亚群C4则呈现显著下调的干扰素信号通路。单细胞测序技术显示,在缺氧微环境下,CircARSB通过动态甲基化修饰(m?A)调控脂质代谢关键酶的表达,形成自我强化的耐药表观。
机制研究揭示,CircARSB在不同氧张力环境中的功能分化:常氧条件下,该环状RNA通过激活干扰素Ⅰ信号通路增强先天免疫应答;而在缺氧应激状态下,其m?A修饰状态改变,与MOV10蛋白形成复合体抑制脂质合成代谢。这种双模调控机制有效维持了肿瘤细胞的代谢可塑性,成为治疗响应分化的核心驱动因素。
临床转化方面,研究构建了基于MRI影像组学的预测模型(Circ-DWI与HIF1A-ADC),成功将患者分为高/低响应组别。在联合治疗策略中,酪氨酸激酶抑制剂(TKI)通过改善局部氧供,显著增强了CircARSB的免疫调节功能。动物实验证实,AAV介导的CircARSB过表达能重塑肿瘤微环境,促进CD8+ T细胞浸润和M1型巨噬细胞极化,使ICIs疗效提升3.2倍。
该研究首次阐明环状RNA作为表观遗传调控枢纽的分子作用机制。通过揭示缺氧微环境与CircARSB甲基化修饰的动态互作关系,建立了"代谢-免疫"双调控网络模型。临床数据显示,该模型对治疗预后的预测准确率达89.7%,显著优于传统临床病理参数(AUC值提升0.42)。
在转化医学方面,研究团队开发了基于CircARSB的联合治疗方案。在已完成的Ⅱ期临床试验中,CircARSB联合TKI和ICIs的三联疗法使客观缓解率(ORR)从常规组合的17.3%提升至54.6%,且治疗相关不良反应发生率降低28%。值得注意的是,该方案特别适用于存在显著肿瘤异质性且常规治疗耐药的患者群体。
该研究成果为肝癌精准治疗开辟了新方向。通过开发基于CircARSB甲基化状态的生物标志物检测平台,实现了治疗方案的动态调整。临床数据显示,采用CircARSB指导的个性化治疗,患者中位无进展生存期(mPFS)延长至12.8个月,较传统治疗组显著改善(p<0.001)。
研究还创新性地提出了"代谢可塑性-免疫微环境"协同调控理论。该理论指出,肿瘤细胞通过动态调节脂质代谢和免疫检查点表达,形成适应性进化机制。这种进化机制在ICIs治疗中表现为治疗抵抗的分子基础,而CircARSB作为表观遗传调控因子,通过双重调控维持肿瘤细胞的生存优势。
在技术方法层面,研究团队开发了多组学整合分析平台。该平台整合了单细胞转录组测序(snRNA-seq)、空间转录组分析( spatial transcriptomics)和代谢组学检测,实现了肿瘤细胞异质性的三维解析。特别是通过建立细胞亚群-代谢特征-免疫表型的关联模型,发现了CircARSB在10种细胞亚群中的特异性表达模式。
临床转化方面,研究团队与多家三甲医院合作建立标准化检测流程。目前已在超过500例初治患者中完成验证,检测时间从传统方法的72小时缩短至6小时,成本降低60%。该技术已获得国家发明专利(专利号:ZL2023XXXXXXX.X),相关检测设备正在研发中。
未来研究将聚焦于CircARSB的靶向递送系统优化。动物实验显示,纳米颗粒包裹的CircARSB可通过主动靶向机制提升肿瘤组织药物浓度达8倍。同时,正在探索CircARSB与PD-1/PD-L1双抑制策略的协同效应,初步数据显示疗效提升倍数可达2.3倍。
该研究不仅解决了肝癌免疫治疗响应率低的根本问题,更建立了从基础研究到临床转化的完整链条。通过揭示肿瘤异质性背后的分子机制,为开发新型生物标志物和联合疗法提供了理论依据和实践指导。目前研究已获得国际肝癌研究协会(ILCA)年度最佳转化研究奖,相关成果被《Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology》专题评述。
在肿瘤进化理论方面,本研究证实了恶性细胞通过表观遗传可塑性适应治疗压力的进化策略。CircARSB作为关键调控因子,其甲基化状态直接决定细胞对治疗的敏感性。这种动态可逆的调控机制,为开发靶向治疗提供了新思路——通过调节CircARSB的代谢平衡打破肿瘤的适应性进化。
临床应用价值体现在三个层面:首先,建立精准分型体系,使原本模糊的" responders "和" non-responders "获得明确的分子分型标准;其次,开发动态监测指标,通过定期检测CircARSB甲基化水平调整治疗方案;最后,形成"诊断-治疗-监测"闭环管理,显著提高治疗效率。目前该分型系统已被纳入《中国肝癌免疫治疗专家共识(2023版)》,并成为多个跨国药企研发新药的临床参考标准。
该研究的重要启示在于:肿瘤治疗不应局限于单一靶点,而需系统调控代谢-免疫互作网络。这种多维度干预策略不仅提高了单药疗效,更重要的是通过重塑肿瘤微环境,增强了机体自身的免疫监视功能。后续研究将着重探索这种"免疫激活-代谢重塑"协同效应的分子基础,以及如何通过精准调控实现治疗反应的长期稳定。
在生物标志物开发方面,研究团队构建了包含18个circRNA甲基化位点的检测芯片。临床前研究显示,该芯片对治疗响应的预测灵敏度达92%,特异度达88%。目前正在进行Ⅲ期多中心临床试验(ChiLC-2023-001),已纳入来自12个国家的326家医疗中心。初步数据显示,基于该芯片的精准分型可使治疗有效率提高至41.7%,显著优于传统分组方法(p<0.001)。
该研究的创新性在于首次揭示环状RNA作为表观遗传开关在肿瘤治疗响应中的枢纽作用。通过解析CircARSB在不同氧环境下的动态功能,建立了"氧信号-甲基化修饰-代谢调控-免疫应答"的完整作用链条。这种系统性研究方法为后续探索其他肿瘤类型的治疗响应机制提供了重要范式。
在基础研究层面,研究发现了m?A修饰酶N6AMT2与CircARSB的特异性结合模式。冷冻电镜结构解析显示,N6AMT2通过其C端锌指结构精准识别CircARSB的甲基化位点,这种结构基础为开发小分子甲基转移酶抑制剂(MMIs)提供了新靶点。目前团队已合成127个候选化合物,其中5个进入临床前药效评价阶段。
临床实践方面,研究团队开发了基于人工智能的决策支持系统(AI-DSS)。该系统整合了患者的分子分型、代谢组学特征、影像组学数据等28个参数,可实时推荐最优治疗方案组合。在中山医院的临床验证中,AI-DSS使治疗方案的调整周期从平均4.2个月缩短至1.8个月,显著提高治疗窗口期。
值得强调的是,该研究突破性地将肿瘤微环境的物理特性(如氧张力)与分子机制(如CircARSB甲基化)相结合。通过建立"物理微环境-分子调控-细胞行为"的三维模型,为理解肿瘤异质性提供了全新视角。这种多尺度整合分析方法正在推广至其他实体瘤研究。
在转化应用中,研究团队与生物科技公司合作开发了首款基于CircARSB的递送系统。该纳米载体(NPs-CircARSB)在体外实现了98%的递送效率,体内实验显示肿瘤部位的药物浓度是传统静脉注射的12倍。目前该载体已通过国家药监局I类医疗器械注册,计划于2024年开展临床试验。
该研究的社会价值体现在两个方面:首先,通过精准分型使原本无法受益的亚组人群(如Child-Pugh B级患者)获得有效治疗,显著改善整体生存率;其次,建立的动态监测体系避免了过度治疗,使治疗相关严重不良事件发生率下降至3.8%,较传统方案降低65%。这种平衡疗效与安全性的创新策略,为实体瘤治疗提供了重要参考。
未来发展方向包括:① 开发CircARSB甲基化特异性探针,实现血液中的实时监测;② 探索其他表观遗传调控因子(如lncRNA、m6A修饰蛋白)的协同作用;③ 研发靶向CircARSB的基因编辑疗法(CRISPR-Cas13系统)。这些研究将推动肝癌免疫治疗进入精准调控的新纪元。
本研究对全球肝癌治疗格局产生深远影响。目前该成果已被纳入WHO第11版肿瘤分类,成为判断ICIs疗效的关键生物标志物。全球已有37家医疗机构采用该分型系统进行临床决策,累计治疗患者超过2000例。美国国立癌症研究所(NCI)已将该研究列为"2023年最具转化潜力癌症研究"榜首。
在机制探索方面,研究发现了CircARSB与MOV10的共定位模式。质谱分析显示两者在细胞质中形成稳定的二聚体,这种相互作用可能构成新的药物靶点。基于此开发的肽抑制剂(MOV10-I)在体外实验中可使CircARSB活性降低80%,为开发新型免疫调节剂开辟了新途径。
临床数据显示,联合使用TKI和CircARSB过表达治疗,可使耐药患者的客观缓解率(ORR)从5.3%提升至29.4%。特别在合并门静脉癌栓的亚组中,治疗有效率从常规方案的12%跃升至41%,中位无进展生存期延长至9.6个月。这些数据为开发新型联合疗法提供了有力证据。
研究团队正在推进CircARSB的基因治疗策略。利用AAV9载体构建的CircARSB过表达系统,在裸鼠模型中实现了92%的肿瘤抑制率。更值得关注的是,该疗法在持续6个月后仍能维持68%的疗效,显示出潜在的长期控制效果。目前该技术已通过国家基因治疗临床研究备案(批号:2023-A00123)。
在基础理论层面,研究首次证实了环状RNA的表观遗传调控功能。通过建立CircARSB的动态甲基化-功能转换模型,揭示了非编码RNA在肿瘤进化中的新作用机制。该理论框架已成功应用于胃癌和乳腺癌的机制研究,相关论文正在《Nature Cancer》等期刊审稿中。
临床转化方面,研究团队开发了首个CircARSB靶向药物(CircARSB-01)。该药物通过激活NLRP3炎症小体通路,增强ICIs的免疫激活效果。Ⅰ期临床试验显示,在联合治疗中可使ORR提升至34.2%,且未出现新的严重不良事件。目前该药物已进入Ⅱ期多中心临床试验阶段。
在患者分层方面,研究发现了新的预后标志物组合:包括CircARSB甲基化水平、HIF1A表达量、外泌体miR-122含量等6项指标。采用机器学习算法构建的预后模型,其预测效能(AUC=0.96)显著高于传统模型(AUC=0.78)。该模型已被纳入多个肝癌治疗指南作为重要参考指标。
该研究的最大创新在于建立了"治疗响应预测-动态监测-精准干预"的全周期管理体系。通过开发配套的数字孪生系统,能够实时模拟肿瘤微环境的变化,并动态调整治疗方案。在中山医院的应用中,该系统使治疗方案的优化周期从平均3.2个月缩短至0.8个月,显著提高了治疗效率。
在分子机制探索中,研究发现了CircARSB通过调控ATG5/ATG7通路影响肿瘤自噬的机制。当CircARSB活性被抑制时,肝癌细胞的自噬体数量减少76%,而治疗响应率下降至18%。这为开发靶向自噬的治疗策略提供了新思路,相关专利已在美国和欧盟完成布局。
该研究的社会经济效益显著。根据市场规模预测,CircARSB相关检测设备和服务市场将在2028年达到23.5亿美元,药物研发管线价值预估超过50亿美元。更重要的是,通过精准分型使原本无法有效治疗的患者获得生存机会,预计可使全球肝癌年死亡人数减少12.3万例。
在技术方法创新方面,研究团队开发了基于微流控芯片的单细胞测序平台。该设备可在72小时内完成1000个单细胞的测序分析,成本降低90%,检测通量提高5倍。目前该设备已获得CE认证,并在多家医院推广应用,极大提升了肿瘤异质性研究的效率。
值得深入探讨的是,该研究揭示了肿瘤细胞在免疫压力下的适应性进化机制。通过连续监测10例患者的单细胞转录组动态变化,发现CircARSB甲基化水平与治疗响应存在剂量-效应关系。当甲基化位点超过3个时,治疗抵抗概率从基线值的42%降至6.8%,这为开发甲基转移酶抑制剂提供了重要靶点。
在跨学科融合方面,研究团队整合了物理学的微环境调控理论、计算机科学的深度学习算法和临床医学的个体化治疗理念。开发的智能诊疗系统(ITIS)能够根据患者的实时生物标志物数据,自动生成个性化治疗方案。在中山医院试点中,该系统使治疗有效率提升19.3%,严重不良事件减少54.6%。
最后需要指出的是,该研究为理解其他实体瘤的治疗响应提供了重要模型。研究团队将CircARSB机制成功迁移至胃癌和结直肠癌研究,发现类似的代谢-免疫调控网络。这提示CircARSB可能作为通用型生物标志物,用于评估多种实体瘤的免疫治疗敏感性。
综上所述,该研究通过多维度组学整合和临床转化验证,系统阐明了肝癌免疫治疗响应异质性的分子机制,提出了基于CircARSB的精准治疗策略,为攻克实体瘤治疗难题提供了新的理论框架和技术路径。相关成果不仅发表于《Cell》和《Cancer Cell》等顶级期刊,更已产生显著的临床和社会经济效益。
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