综述:线粒体丙酮酸载体的结构、转运及抑制机制

《TRENDS IN Biochemical Sciences》:Structural transport and inhibition mechanism of the mitochondrial pyruvate carrier

【字体: 时间:2025年12月09日 来源:TRENDS IN Biochemical Sciences 11

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  本综述系统解析了线粒体丙酮酸载体(MPC)的原子结构突破,首次揭示了其跨膜取向、pH依赖的丙酮酸转运机制及多类抑制剂的结合模式。文章整合冷冻电镜(cryo-EM)与AlphaFold建模数据,阐明了MPC作为SLC54家族成员,通过交替开放机制将糖酵解终产物丙酮酸转运至线粒体基质,为治疗2型糖尿病(T2D)、代谢功能障碍相关脂肪性肝病(MASLD)、神经退行性疾病及特定癌症的药物研发提供了关键结构基础。

  
生理功能、生化特性与治疗机遇
真核细胞依赖高效的代谢途径通过氧化磷酸化(Oxidative Phosphorylation)产生ATP。线粒体丙酮酸载体(MPC)作为位于线粒体内膜(Mitochondrial Inner Membrane)的整合膜蛋白复合物,在此过程中扮演关键角色:它负责将胞浆糖酵解产生的丙酮酸(Pyruvate)转运至线粒体基质。丙酮酸还可来源于乳酸(Lactate)、苹果酸(Malate)及丙氨酸(Alanine)、丝氨酸(Serine)、半胱氨酸(Cysteine)等生糖氨基酸。进入基质后,丙酮酸经丙酮酸脱氢酶(Pyruvate Dehydrogenase)转化为乙酰辅酶A(Acetyl-CoA),进入三羧酸循环(TCA Cycle),使ATP产量较乳酸发酵提高约15倍。此外,丙酮酸也可经丙酮酸羧化酶(Pyruvate Carboxylase)转化为草酰乙酸(Oxaloacetate),为TCA循环提供回补反应(Anaplerotic Input)底物,或在糖异生(Gluconeogenesis)中通过苹果酸-天冬氨酸穿梭(Malate/Aspartate Shuttle)合成葡萄糖。TCA循环生成的柠檬酸(Citrate)可经柠檬酸载体(Citrate Carrier, CIC)输出至胞浆,启动新生脂质合成(De Novo Lipogenesis)。因此,MPC在胚胎发育等多种生理过程中至关重要,并已成为代谢功能障碍相关脂肪性肝炎(MASH,原NASH)、特定癌症、脱发(Alopecia)及神经退行性疾病的潜在药理靶点。
螺旋拓扑结构与膜取向
早期研究基于半胱氨酸标记和有限蛋白酶解实验(Limited-proteolysis Experiments)曾提出酵母Mpc1含2个跨膜螺旋(Transmembrane Helices, TMs),Mpc2/Mpc3含3个TM,且N端位于基质、C端分别位于基质(Mpc1)和膜间隙(Mpc2)。然而,近期人源MPC1L/MPC2与MPC1/MPC2的冷冻电镜结构明确显示,每个原体(Protomer)均包含一个N端两亲性螺旋(Amphipathic Helix, AH)、一个短连接螺旋(Linker Helix, LH)及三个跨膜螺旋(H1, H2, H3)。连接H1与H2的短环含有一个310-螺旋,而H3延伸至基质侧。
关于膜取向,Sichrovsky等人通过流式细胞术(Flow Cytometry)抗体标记和蛋白酶K保护实验(Proteinase K Protection Assay)证实:在保留天然取向的线粒体(Mitoplasts)中,MPC1和MPC2的C端均受保护;而在内膜外翻的亚线粒体颗粒(Submitochondrial Particles, SMPs)中,C端可被蛋白酶降解。这表明两个原体的N端两亲性螺旋位于膜间隙(Intermembrane Space, IMS),而C端均位于基质(Matrix)。此取向与TIM22介导的插入机制一致,且更合理:带负电的抑制剂(如UK5099)无需克服线粒体膜电位(Membrane Potential)跨内膜扩散,仅需通过外膜电压依赖性阴离子通道(Voltage-Dependent Anion Channels)即可结合MPC。
冷冻电镜与AlphaFold解析的结构
MPC结构解析的延迟源于其分子量小(~40 kDa)、疏水性强及伪二重对称性(Pseudo-twofold Symmetry)对冷冻电镜技术的挑战。多个研究组通过使用fiducial markers(如legobodies、nanobodies、pro-macrobodies)或构建融合蛋白(Fusion Proteins)增大颗粒尺寸,成功解析了人源MPC1/MPC2与MPC1L/MPC2在外向开放(Outward-open)、闭塞(Occluded)及内向开放(Inward-open)状态的结构,分辨率范围在3.0–3.7 ?。
结构证实MPC为异源二聚体(Heterodimer),属于转运蛋白-视蛋白-G蛋白偶联受体(Transporter-opsin-G-Protein-coupled Receptor, TOG)超家族。每个原体的三个跨膜螺旋围绕一个伪二重对称轴排列,形成桶状结构,中心为水填充的空腔。N端和连接螺旋为两亲性,柔性较大,位于内膜外叶。MPC2的两亲性螺旋形成螺旋-转角-螺旋(Helix-turn-helix) motif,破坏了整体对称性。
构象机制与底物配位
MPC通过交替开放机制(Alternating Access Mechanism)转运丙酮酸:从外向开放状态(底物结合位点朝向膜间隙)经闭塞状态(位点两侧不可及)转变为内向开放状态(位点朝向基质)。
He等人和Sun等人分别报道了MPC1/MPC2在丙酮酸存在下的内向开放状态结构,但底物密度较弱,可能捕获了丙酮酸释放至基质的瞬间。Liang等人报道的闭塞状态结构中,未明确观察到丙酮酸结合。Sichrovsky等人利用AlphaFold Multimer生成了覆盖全部构象状态的模型,并通过诱导契合对接(Induced-fit Docking)预测了闭塞状态下的丙酮酸结合模式:丙酮酸与MPC1L的H86、MPC2的K49和N100形成关键相互作用。突变验证显示,H86(MPC1L)和K49(MPC2)对丙酮酸结合至关重要。
丙酮酸转运依赖跨内膜pH梯度(ΔpH)而非膜电位,表明为电中性(Electroneutral)机制。热稳定性位移实验(Thermostability Shift Assays)显示丙酮酸结合具有pH依赖性:在pH<6时结合强,pH>6时结合弱,转折点约在pH 6,可能与H86(pKa~6)的质子化状态相关。在低pH下,质子化的H86与K49通过离子相互作用结合丙酮酸,Y64和N100提供额外氢键;而在高pH下,中性H86与Y64形成氢键,促使底物释放。
ΔpH依赖的丙酮酸转运循环模型
基于上述机制,提出以下ΔpH依赖的交替访问模型(图4):
  1. 1.
    外向开放状态:结合位点暴露于膜间隙局部微环境(pH可能<6)。丙酮酸进入中心空腔,其羧基与带正电的K49相互作用,促进H86质子化。
  2. 2.
    底物结合触发构象变化:丙酮酸结合使K49与H84/H86靠近,降低能垒,过渡至丙酮酸结合的闭塞状态。
  3. 3.
    构象变化暴露于高pH环境:结合位点转向基质侧(pH高),H84/H86去质子化,丙酮酸结合模式重组并释放。
  4. 4.
    转运体重置:内向开放apo状态经apo闭塞状态返回外向开放状态,完成循环。
    外向开放状态因亚基间接触更多而能量较低,为优势构象;底子和质子结合降低能垒,使内向开放状态可达。外向开放状态空腔狭窄,利于静电吸引丙酮酸;内向开放状态空腔扩大,加速底物释放。
抑制剂结合的结构基础
MPC是治疗代谢疾病的重要靶点,其结构与多种抑制剂复合物已被解析:
  • UK5099及其衍生物C7:氰基丙烯酸基团(Cyano-acrylate Group)深入结合空腔底部,羧基与H84(MPC1)和K49(MPC2)形成盐桥,N33、Y62(MPC1)及N100(MPC2)提供氢键。苯基吲哚基团可旋转,与Y85(MPC2)或F71(MPC1)发生π-π堆积。C7的呋喃环与F71(MPC1L)和W82(MPC2)堆叠,硝基可能与N79(MPC1L)相互作用,解释其高亲和力(IC50~5 nM)。
  • 噻唑烷二酮类(Thiazolidinediones, TZDs):如米托格列酮(Mitoglitazone, MTG)和GW604714X,TZD环通过氢键与Y64、H86(MPC1L)、K49和N100(MPC2)相互作用。米托格列酮C5为手性中心,易外消旋化;GW604714X的C5为sp2杂化,双键可呈E/Z构型,Z构型能最大化蛋白-抑制剂相互作用。
  • 扎普司特(Zaprinast):杂环指向空腔底部,与Y64、H86(MPC1L)、K49和N100(MPC2)形成氢键。
尽管化学结构迥异,所有抑制剂均结合于外向开放状态的同一空腔:其极性基团(如氰基丙烯酸、TZD环、三唑并嘧啶酮环)模拟丙酮酸的羧基和羰基,与K49和H84/H86相互作用;中心芳香基团则与MPC的芳香残基发生疏水堆积。突变和结合实验验证了K49、H86、W82等残基对抑制剂结合的关键作用。
结语与展望
人源MPC结构的多状态解析是理解其转运与抑制机制的重大突破,揭示了ΔpH驱动的丙酮酸转运原理及多类抑制剂通过模拟底物相互作用“锁死”外向开放状态的共同策略。这些发现为针对癌症、2型糖尿病、MASH及神经退行性疾病的基于结构的药物设计(Structure-based Drug Design)奠定了分子基础。未来研究仍需探索MPC的进化起源、构象变化触发机制、潜在反向底物(Counter-substrate)、质子耦合细节及其他抑制剂类的结合模式,以全面揭示这一关键转运体的生物学功能与治疗潜力。
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