宏蛋白质组学揭示肠道微生物组对结构特异性寡糖的个性化功能响应

《npj Biofilms and Microbiomes》:Microbiome-dependent functional responses to structurally distinct oligosaccharides revealed by metaproteomics

【字体: 时间:2025年12月10日 来源:npj Biofilms and Microbiomes 9.2

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  本研究针对个体间肠道微生物对益生元响应差异的难题,采用宏蛋白质组学技术结合ex vivo RapidAIM培养系统,系统解析了六种结构各异寡糖对三位健康女性肠道微生物功能的影响。研究发现尽管存在共享的代谢特征,但微生物对寡糖的精细代谢响应具有高度个体特异性,且初始菌群组成决定功能冗余模式。该研究为精准营养干预提供了蛋白质组学层面的理论依据。

  
在我们每个人的肠道深处,存在着一个复杂而活跃的微生物世界——肠道微生物组,它们如同一个隐形的器官,默默参与着营养代谢、免疫调节和健康维护。近年来,通过膳食干预调节肠道微生物组已成为改善健康的新策略,其中寡糖作为重要的益生元备受关注。然而,一个关键科学问题始终困扰着研究人员:为什么同样的益生元在不同人身上会产生截然不同的效果?
传统研究多聚焦于微生物组成变化或基因组潜能预测,但无法揭示微生物在接触特定寡糖时的真实功能状态。正是这一认知空白,促使张爱玲等研究人员在《npj Biofilms and Microbiomes》上发表了一项创新性研究,他们利用宏蛋白质组学技术,深入探究了肠道微生物组对六种结构各异寡糖的个性化功能响应。
研究团队采用标准化ex vivo RapidAIM培养系统,结合高分辨率质谱分析,对三位健康女性捐赠者的肠道微生物进行了精细解析。研究共检测到1,365,863条肽段和21,068个定量蛋白质,覆盖792个物种,建立了全面的蛋白质表达图谱。
个体差异与共享响应模式
研究发现,三位女性的肠道微生物组基线组成存在显著差异,且这种差异在接受寡糖干预后依然保持。尽管存在个体特异性,研究人员还是发现了一些共同的响应规律:所有寡糖处理均上调了氨基酸生物合成和膜生物合成相关功能,同时下调了复杂碳水化合物降解和能量节约途径。这表明,在富寡糖条件下,肠道微生物普遍倾向于生长相关的代谢活动。
CAZymes的特异性诱导与功能冗余
研究最有趣的发现之一是关于CAZymes(碳水化合物活性酶)的表达模式。每种寡糖都特异性诱导了相应的糖苷水解酶:阿拉伯寡糖(ARA)诱导阿拉伯糖苷酶,酮糖(KES)诱导果糖苷酶,棉子糖(RAF)诱导α-半乳糖苷酶等。这种底物特异性响应在所有个体中一致出现,表明微生物组具有共享的功能适应性。
更重要的是,所有寡糖处理均导致粘蛋白降解酶(如GH33、GH84)的下调,这意味着当微生物能够利用外源寡糖时,它们对宿主粘膜的依赖性降低,这可能是益生元有益作用的重要机制。
基线组成决定功能响应
研究发现,微生物的基线相对丰度在很大程度上决定了其后续的酶生产能力和功能响应。例如,在F2个体中,双歧杆菌(Bifidobacterium)的基线丰度较高,该菌株在多种寡糖处理下均能积极响应并产生相关CAZymes;而在F1个体中,普雷沃菌(Prevotella)的基线丰度较高,仅在该个体中检测到GH51对ARA处理的响应。
交叉喂养现象与代谢分工
研究还揭示了有趣的交叉喂养(cross-feeding)现象。在木三糖(XYL3)处理中,仅有三个属的微生物负责初始降解步骤,但随后的木糖异构酶(参与木糖代谢)却在六个额外属的24个物种中表达,表明降解产物可被更广泛的微生物群落成员利用,形成了代谢分工的合作模式。
关键技术与方法
本研究采用ex vivo RapidAIM培养系统对三位健康女性捐赠者的肠道微生物进行标准化培养,使用六种结构不同的寡糖进行干预。通过SP3(single-pot, solid-phase-enhanced sample-preparation)方法进行蛋白质提取和酶解,利用液相色谱-质谱联用技术进行肽段分析。采用Metalab-MAG和pFind软件进行数据库搜索,基于UHGP(unified human gastrointestinal protein)数据库进行肽段和蛋白质鉴定。使用MetaX进行分类群与功能关联分析,通过KEGG(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)和CAZymes数据库进行功能注释,应用WGCNA(weighted gene co-expression network analysis)进行共表达网络分析。
功能响应的个体特异性
尽管存在共同响应模式,但每个个体的微生物组都展现出独特的功能特征。F1个体的微生物组上调了氨基酸降解途径,F2个体表现出增强的生物合成能力,而F3个体则激活了发酵相关代谢。这些差异反映了微生物组功能响应的个性化特征。
蛋白质与物种变化的解耦合
一个重要的发现是功能变化与物种丰度变化并非完全同步。约21%-25%的蛋白质变化显著快于对应物种的变化,而37%-47%的蛋白质变化与物种变化趋势相反,这表明微生物可以通过调节蛋白质表达而非种群数量来快速适应环境变化。
研究结论强调,肠道微生物对益生元的响应既受底物结构的约束,更受个体微生物组组成的深刻影响。这种高度个性化的响应模式揭示了传统"一刀切"式益生元干预的局限性,为开发精准营养策略提供了重要依据。宏蛋白质组学技术能够捕捉到基因组预测无法反映的功能动态,为微生物组研究提供了新的视角。
这项研究不仅深化了我们对微生物-饮食互作的理解,更重要的是为未来个性化益生元干预奠定了方法论基础。随着精准营养时代到来,基于个体微生物组特征量身定制膳食干预方案,有望实现更高效、更具针对性的健康促进策略。
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