内在无序区域通过促进靶点搜索驱动酵母转录因子Msn2的启动子选择性

《Nature Communications》:Intrinsically disordered regions facilitate target search to drive promoter selectivity by a yeast transcription factor

【字体: 时间:2025年12月11日 来源:Nature Communications 15.7

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  本研究针对转录因子(TF)如何在基因组中仅占据少量潜在结合位点这一核心问题,以酵母应激响应调控因子Msn2为模型,利用单分子光镊技术,揭示了其内在无序区域(IDRs)通过电荷介导的相互作用促进非特异性DNA结合和一维扫描,从而增强靶标结合速率并赋予启动子选择性的分子机制,深化了对转录调控特异性的理解。

  
在复杂的基因组中,基因的精准表达调控是生命活动的核心。这一过程很大程度上依赖于一类称为转录因子(Transcription Factor, TF)的蛋白质,它们能够识别并结合到基因调控区域(如启动子)的特异DNA序列(即基序,motif)上,从而开启或关闭基因的“开关”。然而,一个长期困扰科学家们的难题是:这些转录因子所识别的核心DNA基序通常很短且具有简并性,导致基因组中存在着成千上万个潜在的结合位点。但令人困惑的是,在活细胞内,转录因子实际上只结合并调控其中一小部分位点。那么,转录因子是如何在茫茫的基因组“海洋”中,快速且准确地找到那些真正具有功能的“目标岛屿”,而忽略掉大量看似合适的“诱饵”位点呢?这背后必然存在着超越核心DNA结合域(DNA-Binding Domain, DBD)识别的、更为精细的调控机制。
近年来,科学家们将目光投向了转录因子中一些结构特殊的区域——内在无序区域(Intrinsically Disordered Regions, IDRs)。这些区域不像传统的蛋白质结构域那样具有固定的三维结构,而是呈现出高度的柔韧性和动态性。越来越多的体内研究表明,IDRs对于许多转录因子准确识别其靶启动子至关重要。例如,在酵母中,缺失了IDRs的转录因子虽然仍能结合DNA,却失去了选择性,无法区分功能性和非功能性位点。然而,IDRs究竟通过何种分子机制来赋予这种“火眼金睛”的能力,其背后的物理化学原理一直不甚明了。是由于它们帮助招募了其他辅助因子?还是通过影响染色质环境?或者,转录因子自身与DNA的直接相互作用就足以实现这种特异性?这些问题亟待在分子水平上进行精确的解析。
为了直接回答这些问题,由以色列理工学院Ariel Kaplan教授领导的研究团队在《自然-通讯》(Nature Communications)上发表了他们的最新研究成果。他们选择出芽酵母中的环境应激响应主调控因子Msn2作为模型。Msn2是一个拥有704个氨基酸的蛋白质,其中包含一个仅由62个氨基酸组成的、负责识别特定DNA基序(如AGGGG)的结构化DNA结合域(DBD),而该DBD的两侧则是大段的内在无序区域(IDRs),这些IDRs已被证明是Msn2在体内实现启动子特异性结合和调控功能所必需的。研究团队巧妙地运用高精度的单分子光镊(Optical Tweezers)技术,像一双微观的“手”一样,直接操纵单个DNA分子,并实时观测Msn2蛋白与其相互作用的动态全过程。通过比较野生型Msn2(WT)和仅保留DNA结合域的截短突变体(DBD)的行为,他们成功地剖析了IDRs在Msn2寻找并结合其靶标DNA过程中所扮演的多重角色,揭示了其增强靶点搜索效率和序列选择性的新颖机制。
本研究主要依赖于几种关键的单分子生物物理技术和生物化学分析。核心实验平台是自定义搭建的双光阱光镊系统,用于对单个DNA分子进行操控和测量。研究设计了特异的DNA构建体,包含待研究的结合基序和侧翼序列。主要技术方法包括:1) DNA解链/再退火实验,用于在单分子水平定量检测蛋白质与DNA的特异性及非特异性结合概率和强度;2) 热涨落动力学分析,通过监测DNA结合位点附近局部双链的瞬时打开与关闭,来精确测定蛋白质的结合和解离速率常数;3) 靶点搜索占据实验(Search to Target Occupation, STO),这是一种新开发的实验方案,用于直接观测蛋白质在DNA链上一维扩散寻找靶点的过程;4) 凝胶迁移或电泳迁移率变动分析(Electrophoretic Mobility Shift Assay, EMSA),用于在溶液中对蛋白质与双链或单链DNA形成的复合物进行分离和鉴定。此外,还利用生物信息学工具对DNA序列的结构特征(如静电势、螺旋参数等)进行了分析。
研究结果
IDRs通过电荷介导的相互作用增强Msn2结合亲和力
研究人员首先通过DNA解链实验比较了野生型Msn2(WT)和缺失了IDRs的DBD突变体与特定DNA结合基序的结合能力。结果发现,WT蛋白的结合概率和将蛋白质从DNA上“拉开”所需的断裂力均显著高于DBD突变体。这表明IDRs确实增强了Msn2与其靶标之间的整体结合亲和力。为了探究其机制,他们通过改变缓冲液离子强度(如添加KCl)或加入带正电荷的氨基酸L-精氨酸(L-arginine)来扰动静电相互作用。这些处理均降低了WT Msn2的结合,而通过调节pH值改变L-精氨酸的电荷状态可部分逆转这种抑制效应,证明IDRs主要通过电荷介导的相互作用来促进DNA结合。
IDRs通过提高结合速率来增强Msn2与靶基序的结合
结合亲和力的改变可能源于结合速率(kon)或解离速率(koff)的变化。通过分析DNA结合位点附近的热涨落动力学,研究人员发现,IDRs的缺失并不影响Msn2从DNA上解离的速率,但却使其结合速率下降了约6倍。这意味着IDRs是通过“帮助”Msn2更快地找到并初始结合到靶点上,从而提升了整体结合效率。此外,对结合状态时长的分析还揭示,Msn2-DNA复合物存在两种动力学性质不同的状态,而IDRs能够稳定其中寿命更长的那一种状态,进一步细化了其调控作用。
IDRs促进Msn2的非特异性DNA协同结合
在分析解链实验数据时,一个意想不到的现象引起了研究人员的注意:WT Msn2会在远离其标准结合基序的DNA位置形成大量的“非特异性”结合,而这种结合在DBD突变体中却很少见。凝胶迁移实验进一步证实,WT Msn2能与DNA形成两种不同组分的复合物,并且较大的复合物的形成表现出协同性,这说明IDRs介导了Msn2分子间的协作,从而形成稳定的非特异性DNA结合。重要的是,即使去除掉标准的结合基序,WT Msn2仍能通过IDRs与DNA发生相互作用,但这种“非特异性”结合实际上对DNA序列本身是敏感的。
IDRs介导Msn2与单链DNA的结合
在研究DNA再退火过程时,研究人员发现了滞后现象,即再退火时的力与解链时同一位点的力不同,这表明有蛋白质结合在解链后暴露出的单链DNA(Single-Stranded DNA, ssDNA)上,阻碍了双链的重新形成。这种现象在WT Msn2中最为显著。凝胶迁移实验直接证明了WT Msn2和仅含IDRs的蛋白都能与单链DNA结合,而DBD突变体则不能。这表明Msn2通过其IDRs具备了一种此前未知的结合单链DNA的能力,这可能在其招募至转录活跃区域(存在瞬时单链DNA,如转录泡)中具有潜在功能。
IDRs使Msn2能够在DNA上进行序列依赖的靶点搜索
综合以上发现,IDRs既能促进初始的非特异性DNA结合,又能加速特异性靶点的识别,这强烈暗示IDRs可能帮助Msn2在DNA上进行高效的“搜索”。为了直接验证这一点,研究人员设计了一个精巧的“搜索至靶点占据”(STO)实验。他们先将DNA完全解链(从而消除靶点),让Msn2非特异性地结合到DNA上,然后将DNA转移到不含蛋白质的溶液中,进行多次解链-再退火循环,观察Msn2是否能通过沿着DNA链的移动(如一维扩散或“滑动”)最终找到并占据那个“隐藏”起来的靶点。结果令人振奋:WT Msn2确实能够在靶点被“隐藏”后,经过几个循环的搜索,成功地在靶点位置实现结合。而当IDRs的功能被破坏(截除或静电屏蔽)时,这种搜索能力则急剧下降。更引人注目的是,当研究人员将DNA的侧翼序列从一个普通序列换成Msn2在体内实际会选择性结合的Hap4基因启动子序列时,WT Msn2成功找到靶点的概率更高、速度更快。这表明,IDRs介导的搜索机制本身就对序列环境敏感,能够优先在“正确”的启动子区域进行高效探索,从而直接贡献于启动子选择性。
结论与意义
这项研究通过精密的单分子实验,清晰地描绘了Msn2转录因子利用其内在无序区域实现高效、特异性DNA靶点搜索的逐步过程模型。该模型始于IDRs通过电荷相互作用介导的与DNA的初始非特异性结合,这种结合本身对序列环境敏感;随后,Msn2在IDRs的辅助下沿DNA进行一维扫描,此过程也受序列特征调控;最终,其结构化的DBD识别并稳定结合到特异的AGGGG基序上。IDRs在整个过程中扮演了“多功能助手”的角色,显著提高了靶标结合的结合速率,并将序列识别的范围从狭小的核心基序扩展至数百碱基对的侧翼区域。
这项工作的意义重大。首先,它首次在单分子水平上直接证实了IDRs可以通过调控转录因子的搜索动力学来赋予启动子选择性,并且这种选择性仅通过转录因子与DNA的直接相互作用即可实现,无需其他细胞因子或染色质环境的参与。其次,它揭示了“非特异性”结合并非完全随机,而是具有其自身的序列偏好性,这为理解转录因子在复杂基因组中的定位提供了新视角。此外,发现Msn2能通过IDRs结合单链DNA,为其可能参与转录相关过程(如结合转录泡或R环)提供了线索。最后,鉴于IDRs在真核生物转录因子中广泛存在,且其序列演化速度快于结构化的DBDs,本研究提出的机制可能代表了一种普适性的基因调控网络演化原理。它不仅深化了我们对基本生命过程——基因转录调控——的理解,也可能为未来干预转录失调相关疾病提供新的思路。
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