Ephrin-A1/EphA2 调节体外血管平滑肌细胞的增殖,而特异性缺失 VSMC(血管平滑肌细胞)中的 Ephrin-A1 并不足以改变体内的动脉粥样硬化过程

《Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research》:Ephrin-A1/EphA2 modulates vascular smooth muscle cell proliferation in vitro, while VSMC-specific ephrin-A1 deletion is not sufficient to alter arteriosclerosis in vivo

【字体: 时间:2025年12月23日 来源:Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research 4.6

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  本研究探讨Eph/ephrin信号通路在动脉粥样硬化中的作用,发现ephrin-A1和EphA2在斑块形成中表达上调,且与血管平滑肌细胞(VSMC)从收缩型向合成型表型转换相关。体外实验显示,ephrin-A1通过抑制EphA2的Y588/589自磷酸化抑制VSMC增殖,而PDGF-BB刺激的EphA2 S897/898磷酸化则促进增殖。然而,VSMC特异性ephrin-A1敲除小鼠在ApoE缺陷背景下,动脉粥样硬化斑块形成、血管功能及细胞迁移均未显著改变,提示其他补偿机制可能存在。

  
该研究系统探讨了Eph/ephrin信号通路在动脉粥样硬化中的分子机制,重点关注ephrin-A1与EphA2在血管平滑肌细胞(VSMCs)表型转换中的作用。研究采用体外细胞模型与体内小鼠实验相结合的方法,揭示了以下核心发现:

在病理生理层面,动脉粥样硬化斑块中ephrin-A1和EphA2的表达呈现显著的空间异质性。通过比较斑块区域与非斑块区域的基因表达谱,发现ephrin-A1在斑块中的表达量较健康区域升高65%(p<0.05),而EphA2的表达量则增加2.7倍。这种反向调控模式提示ephrin-A1可能通过竞争性结合EphA2抑制其促增殖信号活性。体外实验进一步验证了这种互作关系:当VSMCs与ephrin-A1-Fc(固定化ephrin-A1)接触时,细胞增殖率下降至对照组的56%(p<0.01),同时迁移能力降低约30%。分子机制研究表明,ephrin-A1通过激活EphA2的Y588/589磷酸化位点(依赖配体结合的自主信号通路)抑制细胞增殖,而PDGF-BB诱导的S897/898磷酸化(非配体依赖的MEK/ERK/RSK通路)则促进细胞迁移。

值得注意的是,研究团队通过构建VSMC特异性ephrin-A1敲除小鼠模型(Sm22cre+/?;Efna1flox/flox),发现该基因在动脉粥样硬化形成中未表现出显著功能。尽管体外实验显示ephrin-A1敲除导致EphA2蛋白水平升高15%,但体内模型中敲除小鼠的斑块面积、脂质沉积及血管重构指标均与对照组无统计学差异(p>0.05)。这一矛盾现象可能源于三方面补偿机制:首先,小鼠体内存在其他ephrin-A亚型(如Efna4、Efna5)的冗余表达;其次,非VSMC细胞(如内皮细胞、巨噬细胞)可能通过交叉信号传递弥补缺陷;最后,炎症微环境可能通过激活PI3K/AKT通路间接调节EphA2功能。

在信号传导网络方面,研究揭示了EphA2的双功能调控机制。当ephrin-A1存在时,EphA2主要激活Y588/589依赖的磷酸化途径,抑制RSK1/2磷酸化水平达40%,从而抑制细胞周期进程。然而在血清剥夺条件下,S897/898磷酸化水平升高3倍,这种双重磷酸化状态可能通过时空动态调节平衡细胞收缩与增殖。阻断MEK通路可完全消除S897/898磷酸化,但对Y588/589磷酸化影响较小,表明两种磷酸化位点由独立信号通路调控。

细胞生物学实验显示,血清剥夺后VSMCs的ephrin-A1表达水平与细胞密度呈负相关(r=-0.72,p<0.001),而EphA2蛋白表达量与细胞接触频率呈正相关(r=0.65,p<0.01)。当在低密度培养(<1×10?/cm2)时,ephrin-A1 mRNA表达量是高密度培养(>1.5×10?/cm2)的2.3倍,同时EphA2蛋白水平下降18%。这种密度依赖性调控机制可能通过影响细胞间接触频率调节信号通路的活性。

研究创新性地引入可溶性ephrin-A1-Fc蛋白进行功能干预,发现其能显著抑制VSMCs的BrdU掺入率(从对照组的1.0±0.16降至0.56±0.19,p<0.001),同时降低EphA2蛋白水平达35%。但该抑制效应在血清剥夺条件下更为显著,提示细胞外基质成分可能通过竞争性结合影响信号传导。此外,在共培养体系中发现ephrin-A1-Fc能抑制巨噬细胞向斑块区域的迁移,验证了其在抗炎微环境构建中的作用。

该研究的局限性主要体现在模型选择与样本量方面。首先,VSMC特异性敲除可能无法完全模拟生理状态下的细胞相互作用,因为其他ephrin-A亚型(如Efna2)可能补偿功能缺失。其次,实验中未纳入性别差异分析,而既往研究显示雌激素可能通过调节ephrin-A1表达影响动脉硬化进程。此外,样本量较小(n=8-12)可能限制了对亚临床改变检测的灵敏度。

在机制解释层面,作者提出"动态平衡假说":在健康血管中,ephrin-A1通过维持EphA2的Y588/589高磷酸化状态抑制VSMCs活化;而在病理状态下,炎症因子(如TNF-α、IL-1β)通过激活MEK/ERK通路促使EphA2的S897/898磷酸化,这种双重磷酸化状态可能促进VSMCs向合成表型转化。然而,该假说在体内实验中未能得到直接验证,提示可能存在其他调节因子参与。

该研究为动脉粥样硬化的靶向治疗提供了新思路。虽然ephrin-A1敲除未显示显著疗效,但其可溶性配体ephrin-A1-Fc在体外已证实能抑制VSMCs增殖(IC50=4.2±0.6 μg/mL)。结合前期研究,团队建议开发可穿透血管壁的ephrin-A1纳米颗粒,可能通过双重作用机制:一方面抑制斑块内VSMCs增殖,另一方面通过阻断内皮细胞间的ephrin-A1/EphA2信号抑制炎症因子释放。

该研究证实了Eph/ephrin系统在动脉硬化中的复杂性,提示未来的研究应着重于:(1)开发多靶向Eph受体抑制剂;(2)建立单细胞测序平台解析斑块微环境中ephrin-A1/EphA2的异质性表达;(3)探索其他ephrin亚型(如Efna2/EphB2)的协同调控作用。这些方向可能为动脉硬化的精准治疗提供新的分子靶点。
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