揭示隐藏的寄生虫多样性:利用长读长测序技术研究艾美耳虫科(Eimeriidae)和血孢子虫科(Haemosporida)的线粒体基因组(真核生物:顶复门)

《International Journal for Parasitology》:Unveiling hidden parasite diversity: Long-read mitogenomics in Eimeriidae and Haemosporida (Eukaryota: Apicomplexa)

【字体: 时间:2025年12月31日 来源:International Journal for Parasitology 3.2

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  线粒体基因组测序技术在刘易斯虫科和血孢子虫科混合感染解析中的应用。通过一步PCR扩增结合牛津纳米孔长读序列技术,成功完成29条高质量线粒体基因组组装,揭示传统测序方法难以检测的混合感染现象,并构建了首个完整的台湾地区刘易斯虫科线粒体基因组参考数据库,为寄生原虫的系统发育和生态多样性研究提供新方法。

洪培航|余思佳|曾浩友|周祖春|林信宇|修东毅|林玉萱|卢成佑|王昭民|赖成宏|周顺|德川敏宏
台湾中兴大学兽医学院兽医系,台中市南区兴大路145号

摘要

顶复门寄生虫的线粒体基因组表现出显著的结构多样性,从高度简化的线性分子到环状串联体不等,但由于技术限制,对其全面表征一直受到阻碍。本研究建立了一种新的集成工作流程,结合了一步PCR扩增和Oxford Nanopore Technologies (ONT)技术,对Eimeriidae和Haemosporida寄生虫的完整线粒体基因组进行了测序。从15个样本中成功组装出了29个高质量的线粒体基因组(12个Eimeriidae,17个Haemosporida),证明了该方法的灵敏度。比较分析显示,在11个样本中存在隐匿的混合/共感染现象,而这些现象通过Sanger测序无法检测到,这突显了ONT技术在揭示真实寄生虫多样性方面的优越性。利用迄今为止最大的Eimeriidae数据集进行系统基因组重建,确认了雀形目Isospora属的单系性,并鉴定出一个来自Ptyas major的新Caryospora谱系。在Haemosporida中,对202个线粒体基因组的分析揭示了非单系的家族关系。选择分析表明,Eimeriidae的线粒体蛋白质编码基因主要经历了纯化选择。我们的发现强调了长读长线粒体基因组学在阐明复杂感染动态方面的实用性,并为研究研究不足的顶复门寄生虫的生物多样性提供了一个可扩展的框架,这对理解它们的进化生态学和宿主-寄生虫相互作用具有重要意义。

引言

顶复门是一个多样化的专性寄生原生生物群体,包含超过6000种已描述的物种,还有无数物种有待进一步研究,其中许多具有重要的医学和兽医价值(Morrison, 2009; Votypka et al., 2016; Oberstaller et al., 2021)。值得注意的病原体包括引起疟疾的Plasmodium属(Haemospororida: Plasmodiidae),每年导致大量死亡(Venkatesan, 2025);Toxoplasma gondii(Eucoccidiorida: Sarcocystidae),感染了全球约三分之一的人口(Dubey, 2021);以及Eimeria属(Eucoccidiorida: Eimeriidae),它们会引起家禽和牲畜的严重球虫病(Bangoura and Bardsley, 2020; Blake et al., 2020; Mathis et al., 2025)。这些寄生虫的线粒体基因组(线粒体基因组)不仅因其原核起源和关键功能而成为潜在的药物靶点(Mather et al., 2007; Goodman et al., 2017; Collier et al., 2025),而且还是研究物种形成、进化关系和生态多样性的关键位点(Karadjian et al., 2016; Hikosaka et al., 2010, 2011b, 2011; Hikosaka et al., 2012, Hayakawa et al., 2012; Morgan and Godwin, 2017; Pacheco et al., 2018b, 2022; Léveillé et al., 2019; Kruth et al., 2020)。
顶复门线粒体基因组显示出显著的结构多样性。它们通常编码三个蛋白质编码基因(PCGs):细胞色素c氧化酶亚基I和III(COI和COIII)以及细胞色素b(COB),同时还包含分散在整个基因组中的高度片段化的核糖体RNA基因(rRNAs),但完全缺乏转运RNA基因(Pino et al., 2010; Hikosaka et al., 2013; Feagin et al., 2012; Berná et al., 2021; Collier et al., 2025; Kruth et al., 2025)。某些类群,如Cryptosporidium属,经历了极端简化,形成了缺乏基因组内容的线粒体体(Mathur et al., 2021, Collier et al., 2025),而其他类群如Toxoplasma gondii则表现出复杂的、多分子的结构,包含21个重复序列块(Namasivayam et al., 2021, Tetzlaff et al., 2024)。在已研究的形态中,单分子线性线粒体基因组(长度约为6.6 kb至11.1 kb)在Piroplasmida中占主导地位(Hikosaka et al., 2010, 2012, 2013, Schreeg et al., 2016),而环状串联体在Eimeriidae中被称为“6.2 kb元件”,在Haemosporida中被称为“6 kb元件”,这些元件高度保守且被广泛研究(Hikosaka et al., 2011a, 2011b, 2013, Berná et al., 2021, Kruth et al., 2025)。
其中,Eimeriidae和Haemosporida寄生虫由于它们的生物多样性和全球分布而得到了特别深入的研究。Eimeriidae以Eimeria属为代表,包含超过1800种物种(Duszynski, 2011, Votypka et al., 2016),而Haemosporida在MalAvi数据库中记录了超过5100个鸟类球虫基因谱系(数据访问日期:2024年10月18日)(Bensch et al., 2009),这些寄生虫经常导致单个宿主体内发生多种物种感染(Votypka et al., 2016, Valkiūnas, 2004)。例如,家鸡可能携带多达10种Eimeria物种(Blake et al., 2021)以及多种球虫谱系(Bensch et al., 2009, Hong et al., 2025),这使得病原体的准确检测变得复杂。传统的分子诊断方法,包括线粒体DNA条形码技术(例如Eimeriidae的COI;Haemosporida的COB)(Hellgren et al., 2004, Ogedengbe et al., 2011),往往无法区分混合感染和共感染,因为色谱图不明确,且无法检测到的次要基因型可能被误认为是单核苷酸多态性(Valkiūnas et al., 2006, Martínez et al., 2009, Yeo et al., 2022, Jackwood, 2023, Hong et al., 2025)。尽管辅助方法如多重PCR(Fernandez et al., 2003, Kumar et al., 2014, Ciloglu et al., 2019, Musa et al., 2024)或片段克隆(Pérez-Tris and Bensch, 2005, Megía-Palma et al., 2023; Vieira et al., 2023)可以解决一些问题,但它们受到扩增偏向于优势谱系的影响,引物不匹配限制了它们检测同种混合感染或新谱系的准确性,从而掩盖了真实的感染复杂性。值得注意的是,克隆的PCR产物的序列可能包含聚合酶错误,因此需要分析多个克隆以验证正确的序列(Bensch and Hellgren, 2020)。
虽然下一代测序技术促进了Eimeriidae和Haemosporida寄生虫的线粒体基因组组装(Tang et al., 2015, Karadjian et al., 2016, Ciloglu et al., 2020, Zhou et al., 2023a),但由于序列高度保守且缺乏参考基因组,它可能增加混合感染中出现嵌合体的风险(Pacheco and Escalante, 2023)。像Oxford Nanopore Technologies (ONT)这样的长读长测序平台已经开发出来,用于解决这些限制,为多寄生样本提供了基于扩增子的稳健替代方法(Jackwood, 2023, Huggins et al., 2024a, 2024b, Jiménez et al., 2024, Matoute et al., 2024, Cruz-Saavedra et al., 2024),并实现了几乎完整的线粒体基因组重建(Pacheco et al., 2024, Pacheco et al., 2025, Hong et al., 2025)。然而,ONT技术尚未在Eimeriidae和Haemosporida的完整线粒体基因组组装中得到广泛应用——鉴于线粒体基因组在系统发育推断和物种界定中的核心作用,这是一个重要的空白。本研究旨在通过建立一种新的集成工作流程来解决这些挑战:(1)一步PCR扩增完整线粒体基因组;(2)基于ONT的测序和组装以区分混合/共感染;(3)与传统DNA条形码技术的比较评估;(4)构建一个顶复门线粒体基因组参考数据库,以填补台湾的知识空白。

样本收集和形态学鉴定

本研究共纳入了7个Eimeriidae样本和8个Haemosporida样本,详细样本信息见表1。所有样本均来自动物医院或野生动物救援中心,并已获得书面同意用于研究。卵囊阳性的粪便样本(Eimeriidae)在室温下用2.5% K?Cr?O?保存以促进孢子形成。常规健康筛查中获得的剩余血液样本也被用于

形态学证据与Sanger测序结果的对比

对球虫卵囊的形态学检查(图1)显示了与已知分类描述一致的特征(Duszynski and Wilber, 1997)。在鸡(Gallus gallus domesticus)样本(E1)中,卵囊形态表明存在混合感染;然而,COI条形码分析得到了清晰的色谱图,与Eimeria acervulina(OP800525)的同一性为100%,表明为单一物种感染。对于西伯利亚红松鼠(Sciurus vulgaris exalbidus)样本

讨论

本研究成功实施了一步PCR扩增策略,使用新设计的引物获得了Eimeriidae和Haemosporida寄生虫的完整线粒体基因组。通过ONT测序从15个样本中组装出了29个高质量的完整线粒体基因组,这是首次在这些寄生虫群体中应用长读长测序技术进行完整线粒体基因组重建。比较分析表明,Nanopore测序有效区分了

未引用的参考文献

Valkiūnas and Iezhova, 2023; de Vieira et al., 2023.

CRediT作者贡献声明

洪培航:写作——审稿与编辑,撰写初稿,可视化,验证,方法学,数据分析,概念化。余思佳:撰写初稿,可视化,数据分析,方法学。曾浩友:审稿与编辑,验证,方法学,概念化。周祖春:验证,调查,数据分析。林信宇:资源获取,数据分析。修东毅:调查,数据分析,

资助

本研究未获得公共部门、商业部门或非营利组织的任何特定资助。

利益冲突声明

作者声明他们没有已知的利益冲突或个人关系可能影响本文所述的工作。

致谢

我们感谢Chi玉萱博士为本研究提供宝贵的样本。同时,我们也衷心感谢蔡信宇先生、林珍安女士和徐成琪女士对住院动物的悉心照料以及他们在样本收集和保存文档方面的协助。

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