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鸡肉产品中多药耐药肠炎沙门氏菌明尼苏达血清克隆的基因组调查
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年02月12日 来源:npj Antimicrobials and Resistance
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非伤寒沙门氏菌(Non - typhoidal Salmonella,NTS)是主要的食源性细菌病原体,每年在全球范围内引发大量肠胃炎病例和众多死亡案例,尤其在资源有限地区和免疫功能低下人群中,其引发的侵袭性感染危害严重。而且,NTS 的耐药问题日益严峻,耐药性可通过多种途径传播,给疾病防控带来极大挑战。
来自阿卜杜拉国王科技大学(King Abdullah University of Science and Technology, KAUST)传染病流行病学实验室等多个单位的研究人员,在npj Antimicrobials & Resistance期刊上发表了题为 “Genomic survey of multidrug resistant Salmonella enterica serovar Minnesota clones in chicken products” 的论文。该研究对沙特鸡肉制品中的明尼苏达沙门氏菌(Salmonella enterica serovar Minnesota,S. Minnesota)进行了基因组监测,在了解该菌的种群基因组学、防控食源性疾病以及保障公共卫生安全等方面具有重要意义。
非伤寒沙门氏菌(Non - typhoidal Salmonella,NTS)是主要的食源性细菌病原体,每年在全球范围内引发大量肠胃炎病例和众多死亡案例,尤其在资源有限地区和免疫功能低下人群中,其引发的侵袭性感染危害严重。而且,NTS 的耐药问题日益严峻,耐药性可通过多种途径传播,给疾病防控带来极大挑战。
明尼苏达沙门氏菌作为一种新兴的 NTS 血清型,近年来在禽类养殖及相关食品中的流行率不断上升。自 2003 年巴西针对肠炎沙门氏菌(Salmonella enterica serovar Enteritidis)引入疫苗后,明尼苏达沙门氏菌的流行率随之上升,这可能与疫苗使用和动物中广泛使用抗菌药物有关。同时,巴西作为禽类主要出口国,明尼苏达沙门氏菌借助食品出口链在全球传播。然而,目前对该菌的致病机制了解有限,虽然有一些病例报道,但由于其分离频率低,相关研究较少。此前虽有研究利用全基因组测序探索其多样性和遗传特征,但样本量有限,难以全面掌握其种群动态和耐药克隆的区域流行病学情况。沙特阿拉伯的家禽产业规模庞大,鸡肉消费量大,且存在大量家禽进出口活动,沙门氏菌感染在当地也是常见的细菌传染病,每年有较多病例报告。因此,在沙特开展明尼苏达沙门氏菌的大规模基因组监测研究十分必要。
2020 - 2022 年,沙特食品药品管理局(SFDA)微生物参考实验室从鸡肉产品样本中收集了 859 株沙门氏菌,其中 259 株被鉴定为明尼苏达沙门氏菌。这些菌株部分来自沙特国内超市的家禽样本,部分来自巴西进口的家禽产品,还有 1 株来自沙特吉达医院收治的沙门氏菌病患者。样本采集遵循世界卫生组织指南,分离和初步鉴定按照 ISO 6579 - 1:2017/Amd 1:2020 标准进行,后续通过多种检测方法进行确认,确认后的菌株保存于生物样本库。
采用微量肉汤稀释法,使用 Sensititre EUVSEC3 检测板对所有明尼苏达沙门氏菌分离株进行抗菌药敏试验,该检测板包含 15 种不同类别的抗菌药物。试验过程遵循制造商指南,以大肠杆菌 ATCC 25922 作为质量控制参考菌株,依据不同标准解读最低抑菌浓度(MICs)。
使用 DNeasy PowerSoil 试剂盒提取基因组 DNA,评估纯度和浓度后,利用 Nextera XT DNA 样本制备试剂盒和索引试剂盒构建文库,经纯化、归一化和混合后,在 Illumina NovaSeq 6000 平台上进行 250 bp 双端测序。此外,还对部分样本进行了第三代长读长测序,以获取完整质粒片段。
运用多种软件对短读长测序数据进行质量控制、组装、基因检测、耐药表型关联分析、系统发育分析等。同时,通过获取全球公共数据库中的基因组数据,进行聚类分析和构建最小生成树,以了解菌株的种群结构。利用 BEAST 软件进行系统发育动力学分析,推断克隆的进化参数和传播历史。基于 SNP 距离和分离日期,使用 R 包 adegenet 重建潜在的近期传播网络。对长读长测序数据进行混合组装,注释和分析质粒,包括聚类、基因检测和可视化等,并通过多种统计检验评估数据差异的显著性。
分析 259 株沙特来源的 S. Minnesota 分离株全基因组测序数据,并结合全球 507 株菌株数据,通过 BAPS 聚类分析发现 14 个克隆(BAPS 组)。多数克隆包含来自不同来源的菌株,不同大陆的菌株在主要克隆中分布不均。沙特和巴西的分离株在多个克隆中共存,且包含沙特分离株的克隆遗传多样性较低、样本更新。从系统发育树可知,包含沙特分离株的克隆起源于较老的 BAPS6 克隆,研究中的人类感染分离株与食品分离株在 BAPS2 克隆中聚类,提示可能的食物污染传播途径。
对沙特的 BAPS1 - 4 克隆进行分析,发现它们在 5 - 7.5 年内同时形成,替换率与鼠伤寒沙门氏菌相近。所有克隆形成后种群呈增长趋势,其中 BAPS2 克隆扩张迅速。系统发育动力学树显示 BAPS2 和 BAPS4 克隆在 2010 - 2014 年形成,BAPS2 克隆中巴西样本是沙特克隆及其他国家克隆的祖先,BAPS4 克隆中巴西和葡萄牙的谱系分别产生了沙特的不同分支,表明这些克隆在全球和区域的传播情况。
通过构建传播网络,在 BAPS1 - 4 克隆中分别鉴定出不同数量的传播子网。多数子网包含来自不同城市或国家的分离株,BAPS1 克隆中同一城市不同供应商的菌株存在混合,BAPS3 和 BAPS4 克隆中有国际间菌株传播的网络,BAPS4 克隆中巴西分离株可能通过进口事件成为沙特分离株的祖先,验证了该菌在食物链中本地和全球同时传播的模式。
与较老的克隆相比,包含沙特和巴西样本的 BAPS1 - 6 克隆携带显著更多的 AMR 和毒力因子基因,表明这些近期克隆的毒力和耐药水平增强。
研究鉴定出多种耐药基因,其在不同克隆中的分布存在差异。部分耐药基因位于质粒上,如 ESBL 基因blaCTX - M 存在于多种质粒背景中。虽然耐药基因多样,但只有部分与耐药表型显著相关,如氨基糖苷类的aac3和aph4基因、β - 内酰胺类的blaCMY - 2 基因、大环内酯类的erm和mphA基因等。
S. Minnesota 基因组包含 213 种不同的毒力基因,其中 88 种在辅助基因组中。37 种毒力基因在克隆间分布不同,包括编码 III 型分泌系统(T3SS)的基因和铁载体基因簇等。不同克隆具有独特的铁载体基因组合,BAPS1 - 6 克隆因携带特定铁载体基因,毒力基因含量更高。
鉴定出 39 个质粒片段,分为 4 个簇。不同簇的质粒在不同克隆中的分布不同,如 Cluster 2 和 Cluster 1 中的质粒在近期 BAPS1 - 6 克隆中更常见,Cluster 3 中的 AMR 相关质粒在 BAPS1 - 4 克隆中低频存在,可能导致新的高耐药克隆出现。
Cluster 4 中的 IncC 质粒具有镶嵌结构,包含耐药和毒力基因,对近期克隆的高耐药和毒力水平有贡献。长读长测序揭示其最大质粒含有毒力岛,耐药基因分散在质粒骨架上,且该质粒可能具有部分接合能力。
IncC 质粒在不同分离株中耐药基因的配置多样,基因存在可变现象。BAPS1 - 5 克隆中含有耐药基因的区域发生重排,部分质粒甚至丢失耐药基因。基因水平的比对显示质粒骨架因耐药基因的移动发生重排,有时会导致毒力岛倒置,这表明质粒的结构变化和重组与克隆扩张同时发生。
研究人员通过对沙特家禽链中 S. Minnesota 的基因组分析,揭示了其种群结构和多样性。过去 10 年出现了具有本地和全球分布的新克隆,其区域和全球扩张与沙特家禽肉的进出口和国内生产模式相符,全球家禽肉生产和贸易链促进了该菌的传播。研究还发现新克隆中存在多种 AMR 基因和毒力基因,其多样性源于水平基因转移和抗菌药物使用的选择压力。IncC 质粒在 S. Minnesota 克隆的近期进化中起关键作用,其重排可能是细菌应对抗菌治疗的适应性机制,可能推动新的高耐药和高毒力克隆的出现。
然而,该研究存在一定局限性。样本多为耐多药菌株,无法评估耐药菌株选择对新克隆出现的影响程度;人源样本稀缺,难以全面了解动物菌株对人类健康的影响。未来研究可扩大样本范围,纳入敏感菌株,并采用 “同一健康” 方法,综合研究人、食品和动物中的分离株,以更全面地了解 S. Minnesota 的多样性、毒力和生存能力,为有效治疗、管理和预防人类和动物疾病提供关键信息。
这项研究首次在沙特大规模开展 S. Minnesota 的基因组监测,为深入了解该菌的进化、传播和耐药机制提供了重要依据,有助于制定针对性的防控策略,保障公共卫生安全,对全球家禽产业和食品安全领域也具有重要的参考价值。
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