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本文利用优化的第二代生长素诱导降解(AID)系统,在小鼠体内研究了中心体蛋白 CEP192 的功能,证实该系统适用于小鼠体内蛋白质降解研究。
### 研究背景
在生物学研究中,探究活体小鼠动态过程中必需基因的功能极具挑战性。传统基于 DNA 和 RNA 的基因敲除与敲低方法存在不可逆和蛋白质消耗动力学缓慢的缺陷。化学诱导降解方法,如 PROTACs(Proteolysis Targeting Chimeras)和化学遗传学方法(dTAG 系统或生长素诱导降解(AID)系统)为解决这些问题提供了新途径。然而,PROTACs 需要针对目标蛋白设计特异性化学配体,应用受限;dTAG 系统在小鼠长期应用时,因诱导蛋白降解的小分子及其载体的毒性而受限,且这两种系统都存在高浓度下的 Hook 效应。
AID 系统利用植物激素生长素作为分子胶水,在其存在时,TIR1 - SCF E3 连接酶复合物可靶向 AID 标记的蛋白质进行降解。第一代 AID 系统虽已应用于哺乳动物细胞,但存在渗漏现象且需高浓度吲哚 - 3 - 乙酸(IAA)。第二代 AID 系统(AID2)通过 Tir1 的点突变,可在低浓度的 IAA 衍生物(如 5 - 金刚烷基 - 吲哚 - 3 - 乙酸(5 - Ad - IAA)或 5 - 苯基 - 吲哚 - 3 - 乙酸(5 - Ph - IAA))作用下发挥功能。AID 系统在果蝇和秀丽隐杆线虫体内应用成功,但在小鼠体内的研究仍有待完善,尤其是在分析必需基因功能方面。
中心体蛋白 CEP192 是癌症依赖图谱(DepMap)确定的常见必需基因。中心体作为微管组织中心,在细胞分裂和纤毛形成等过程中发挥关键作用。然而,CEP192 在哺乳动物细胞中心粒复制中的作用存在争议,且其在小鼠体内的功能尚未得到充分研究。
实验设计
本研究旨在创建表达 OSTIR1 - F74G 和内源性标记 Cep192 的小鼠模型,以表征 AID2 系统在不同组织中的耐受性和有效性,并探究 CEP192 在小鼠体内的功能。研究人员通过 CRISPR - Cas9 技术构建了相关小鼠模型,并对小鼠进行 5 - Ph - IAA 处理,随后从多个方面展开实验研究。
小鼠模型构建
利用 CRISPR - Cas9 技术成功构建了 Rosa26LSL - OSTir1 - F74G和 Cep192mAID - mNeonGreen小鼠模型。构建 Rosa26LSL - OSTir1 - F74G小鼠时,将靶向 Rosa26 位点的 sgRNA 和含有 lox - stop - lox 盒、优化密码子的 OsTir1(含 F74G 修饰)及 Myc 标签的靶向载体共注射到 B6SJL/F2 胚胎中,经与 Sox2 - Cre 雌性小鼠杂交,实现 OSTIR1 的全身表达。构建 Cep192mAID - mNeonGreen小鼠时,将靶向 Cep192 最后一个外显子(48)的 sgRNA 和 DNA 供体构建体共注射,对后代进行筛选和繁殖,获得纯合子小鼠。这些小鼠模型为后续研究提供了有力工具。
5 - Ph - IAA 处理及相关分析
5 - Ph - IAA(5 - 苯基 - 1H - 吲哚 - 3 - 乙酸)在无菌 PBS 中溶解后用于小鼠腹腔注射。研究人员设置了不同的注射剂量(1mg/kg 或 5mg/kg)和注射频率(单次、每 24 小时或每 12 小时注射),对照组注射 PBS 或不处理。对小鼠进行 5 - Ph - IAA 处理后,研究人员开展了多项分析。血液和血清分析显示,重复注射有效浓度的 5 - Ph - IAA 14 天,对小鼠的血常规和血清参数无显著影响;组织病理学评估表明,该处理对小鼠多种组织未造成不良影响,这表明 5 - Ph - IAA 在小鼠体内具有良好的耐受性,为长期实验提供了可行性依据。
AID2 系统在小鼠体内的功能验证
- AID2 系统的耐受性和长期有效性:研究发现,第一代 AID 系统使用的 IAA 在小鼠体内具有毒性,而 5 - Ph - IAA 在诱导蛋白降解的浓度下耐受性良好,且未观察到渗漏降解现象。对 Cep192WT/WT;OsTir1Tir/Tir小鼠连续 14 天每天注射 5 - Ph - IAA(5mg/kg),小鼠行为、体重未出现异常,组织学检查和血液分析也未发现明显变化,表明 AID2 系统适用于小鼠的长期重复给药实验。
- AID2 系统诱导的 CEP192AID降解动力学:给 Cep192AID/AID;OsTir1Tir/Tir小鼠腹腔注射 5 - Ph - IAA(5mg/kg)后,通过荧光显微镜检测不同时间点 CEP192AID的信号强度。结果显示,30 分钟后,CEP192AID在所有检测组织中均显著降低,小肠(SI)中降解速率最快;1.5 小时后,SI、脾脏、肺、胰腺和胃中 > 90% 的 CEP192AID被降解;5 小时后,各组织中降解率均超 95%,SI、胰腺和胃中降解率接近 99%。给药 24 小时后,CEP192AID信号仍保持较低水平,72 小时后,SI、脾脏和胰腺中的 CEP192AID几乎完全恢复,其他组织恢复较慢。较低剂量(1mg/kg)的 5 - Ph - IAA 也能降解部分 CEP192AID,但降解程度低于 5mg/kg 剂量组。这表明 AID2 系统可在不同组织中实现 CEP192AID的快速、可逆且近乎完全的降解,且降解程度可通过 5 - Ph - IAA 剂量调节。
- CEP192 在细胞分裂和中心体功能中的作用:为探究 CEP192 在细胞分裂和中心体功能中的作用,研究人员从胚胎中分离出原代 Cep192AID/AID小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)。用 1μM 5 - Ph - IAA 处理 MEF 细胞后,通过免疫荧光和活细胞成像发现,1 小时内中心体的 CEP192AID几乎完全降解。5 - Ph - IAA 处理的 CEP192AID/AID MEF 细胞在有丝分裂时几乎只形成单极纺锤体,活细胞成像显示,超过 80% 缺乏 CEP192AID的 MEF 细胞在有丝分裂中延迟且无法分裂。用 PLK4 抑制剂 centrinone 处理或降解 CEP192AID后对中心粒数量进行检测,结果表明,CEP192AID降解不影响中心粒数量,反而因细胞有丝分裂失败产生多倍体细胞,导致中心粒数量增加。此外,研究人员还检测了不同处理下中心体相关蛋白的丰度,发现 CEP192AID降解会降低有丝分裂中 CEP152 和 PLK4 的丰度,但不影响间期细胞;同时,显著降低了间期和有丝分裂中中心体 γ - 微管蛋白的丰度,这与缺乏 CEP192 的细胞中双极纺锤体形成受损的现象一致。综合来看,在小鼠中,CEP192 在中心体成熟和有丝分裂纺锤体组装中起关键作用,而非中心粒复制。
- CEP192 在纤毛形成和维持中的作用:利用原代 MEF 细胞中 CEP192AID的快速消耗,研究其在纤毛发生中的作用。对原代 Cep192AID/AID MEF 细胞进行血清饥饿处理并添加 5 - Ph - IAA,结果显示,CEP192AID降解对初级纤毛形成前和形成后的细胞数量均无影响,表明 CEP192 对初级纤毛的形成和维持并非必需。研究人员还利用小鼠气管上皮细胞(mTECs)进一步探究 CEP192 在纤毛发生中的作用。mTECs 可分化为多纤毛细胞(MCCs),在其分化过程中,CEP192AID定位于中心体和新生成的中心粒。用 5 - Ph - IAA 处理 mTECs 后,检测发现 CEP192AID降解对 MCCs 数量、具有运动纤毛的细胞数量以及纤毛维持均无影响。这表明 CEP192 在 MCCs 的分化、中心粒扩增、运动纤毛形成和维持过程中均非必需。
- 长期 CEP192 缺失对小鼠的影响:对 Cep192AID/AID;OsTir1WT/Tir小鼠每 12 小时注射一次 5 - Ph - IAA,持续 3 天或 8 天。结果显示,3 天后,脾脏、SI 等组织中 CEP192AID蛋白水平降低 > 95%。8 天后,Cep192AID/AID;OsTir1WT/Tir小鼠体重显著下降,出现胃肠道症状,SI 和结肠隐窝中大量细胞死亡,脾脏明显变小。持续的 CEP192AID降解导致肠道隐窝有丝分裂指数增加约 2.5 倍,且大多数有丝分裂图像呈单极形态。同时,SI 中中心体 γ - 微管蛋白减少约 50%。当 CEP192AID水平在单次注射 5 - Ph - IAA 72 小时后完全恢复时,有丝分裂指数、中心体 γ - 微管蛋白和双极纺锤体的存在均恢复正常。这表明长期使用 5 - Ph - IAA 导致体内 > 95% 的中心体 CEP192AID降解,进而导致增殖性肠细胞有丝分裂延迟和细胞死亡。
研究讨论
本研究表明,第二代 AID 系统适用于活体小鼠中急性和长期的靶向蛋白质降解研究。与第一代 AID 系统相比,5 - Ph - IAA 耐受性良好,且无渗漏降解现象;与 dTAG 和 PROTACs 等其他体内蛋白质降解系统相比,AID2 系统使用的 5 - Ph - IAA 是小分子,可在 PBS 或生理盐水中给药,无明显毒性和炎症反应,且降解动力学快速,适用于研究有丝分裂或细胞死亡等快速过程。不过,AID2 系统对小鼠遗传学要求更复杂,需要表达 OsTir1,但条件性 OsTir1 等位基因可实现组织特异性降解,这是其他方法难以做到的。
通过 AID2 系统在原代培养和活体小鼠中的应用,研究人员发现小鼠 CEP192 对有丝分裂成功进行至关重要,而对中心粒复制、完整性和成熟无影响。CEP192 的主要功能是招募 γ - 微管蛋白进行微管成核和双极纺锤体形成,缺乏 CEP192 的细胞会形成单极纺锤体,导致有丝分裂失败并成为多倍体。在增殖性肠细胞中,CEP192 也是有丝分裂成功进行所必需的,其持续降解会导致胃肠道缺陷和脾脏缩小。此外,研究还证实 CEP192 对初级和运动纤毛的形成和维持并非必需。
本研究创建的 OsTir1 等位基因是条件性的,可通过组织特异性 Cre 活性驱动表达。在增殖较慢的组织中条件性表达 OsTir1,有望克服全身消耗 CEP192 耐受性有限的问题,为未来研究 CEP192 的细胞类型特异性功能提供可能。