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这篇研究开发了一种 “开启式” 报告分析方法(RNA toehold switch-based reporter assay),能半定量检测反义寡聚体(ASO)的摄取效率。通过筛选不同细胞穿透肽(CPPs)作为 ASO 载体,为发现高效 ASO 载体提供工具,有望推动新型抗菌疗法的发展。
### 引言
抗菌耐药性是全球健康面临的重大挑战,基于可编程物种特异性 RNA 的抗菌药物是传统抗生素的潜在替代品。反义寡聚体(ASO)能靶向细菌 mRNA,抑制关键基因表达,从而导致细菌死亡或恢复抗生素活性 。目前抗菌 ASO 多基于肽核酸(PNA)或磷酰胺吗啉代寡聚物(PMO),但 ASO 需借助载体进入细菌细胞质 。现有评估 ASO 载体递送潜力的方法存在局限性,因此本文开发了一种基于翻译 “开启” 的报告分析方法,用于评估 ASO 进入细菌细胞质的递送情况。
结果
- PNA 介导的 RNA toehold switch 体外激活:研究构建了基于 TS7 toehold switch 的 ASO 传感器,通过体外翻译实验,发现 11mer 的 PNA_toe 能剂量依赖性地激活 TS7 RNA toehold switch,促使融合报告蛋白合成,而非靶向 PNA(PNA_ctrl)则无此作用。
- PNA 递送体内激活 toehold switch:在鼠伤寒沙门氏菌(Salmonella enterica serovar Typhimurium)中建立报告分析体系,用 (KFF)3K(KFF)作为载体递送 PNAs。结果显示,PNA_toe 和 PNA_mid 均能使荧光浓度依赖性增加,且 PNA_toe 激活效果更好、毒性更低,因此选择 PNA_toe 用于后续实验。通过流式细胞术进一步验证,发现荧光变化具有浓度和时间依赖性,且确定 5 μM 为后续实验的最佳浓度。
- 改进的 toehold switch 增强 PNA 介导的激活:对 toehold switch 的茎部进行突变,发现突变位置 9(TS7-Mut_9)的构建体在 PNA 处理后能实现约 50 - 60 倍的激活,高于原始序列,因此选择 TS7-Mut_9 进行后续实验。
- 生长培养基和荧光蛋白对报告激活的影响:比较不同培养基对报告激活的影响,发现 KFF-PNA_toe 在 MHB 和 M9 培养基中能触发约 50 - 60 倍的激活,而在 LB 培养基中仅为 6 - 8 倍。同时,测试不同荧光蛋白,结果表明 sfGFP 作为报告蛋白时,在 4 h 和 6 h 的上调倍数最高,因此继续使用 sfGFP 作为报告蛋白。
- toehold switch 报告可洞察 CPP-PNA 摄取机制:利用沙门氏菌 ΔsbmA突变株验证报告系统与 PNA 摄取的相关性,结果显示,在 ΔsbmA突变株中,KFF-PNA_toe 触发的 GFP 表达显著降低,表明该报告系统可用于评估细菌转运蛋白在 PNA 递送中的作用。
- toehold switch 报告可评估 CPP 介导的 PNA 递送:应用报告分析方法测试 10 种 CPPs 递送 PNA_toe 的能力,结果显示 KFF、RXR 和 ANT 在荧光增加方面表现突出,Seq23 效果最差。在大肠杆菌(E. coli)中进行验证,发现不同菌株对 CPP-PNA 的响应存在差异,且 K12 菌株的荧光信号低于 UPEC 536。
- 流式细胞术显示 toehold switch 激活的动态差异:通过流式细胞术在不同时间点检测荧光,发现 KFF、RXR 和 ANT 在 4 h 时荧光快速上调,而 Seq35、Seq118 等在 17 h 才出现上调。同时,不同 CPPs 介导的 PNA 递送在不同菌株中的动态变化存在差异。
- 报告激活与抗菌 CPP-PNA 共轭物活性相关:测定 CPPs 与靶向acpP mRNA 的抗菌 PNA 共轭物的最小抑菌浓度(MIC),发现报告分析中荧光上调明显的 RXR、KFF 和 ANT,其 MIC 较低,表明报告激活与抗菌活性总体相关,但也存在不一致的情况。
讨论
- “开启式” 报告系统的优势与应用前景:开发的 “开启式” 报告系统可用于研究 ASO 摄取及 CPP-PNA 转运机制,是一种简单且半定量的方法,有望发展为高通量筛选平台。同时,该系统表明 toehold switch 可被生物稳定的 RNA 模拟物激活,在合成生物学中具有潜在应用价值。
- 报告系统揭示的 CPP-PNA 递送动态差异:对 10 种 CPPs 的筛选发现,不同 CPPs 介导的 PNA 递送在荧光上调模式上存在差异,这与 CPPs 的化学性质和稳定性有关。例如,KFF 在培养基中易被蛋白酶降解,导致荧光先升后降;而 RXR 由于其特殊结构,具有抗蛋白酶降解的能力,荧光持续增加。这些差异有助于了解 CPP 在细菌培养中的稳定性以及 PNA 的递送动力学。
- 报告分析方法的局限性与优化策略:该方法在不同细菌菌株中的动态范围存在差异,如在大肠杆菌 K12 菌株中的灵敏度低于沙门氏菌和 UPEC 536 菌株,可能与细菌包膜组成不同有关。为提高灵敏度和动态范围,可优化 toehold switch 和激活 ASO 序列,如对 TS7 序列进行突变筛选,或尝试使用更长的 PNAs。同时,考虑 ASO 与 RNA 的结合亲和力、熔解温度(Tm)等因素,也有助于优化报告分析方法。此外,使用不同荧光蛋白评估质粒拷贝数变化和 CPP-ASO 毒性,以及针对不同细菌优化实验条件,可进一步完善该方法。
展望
该分析方法可用于高通量发现新型 ASO 载体,拓展到其他载体类型,如纳米颗粒和铁载体等。这将有助于使用更多类型的 ASO 骨架,如 2′-4′碳桥连锁核酸(LNA)和 2?-O - 甲氧基乙基(2?-MOE),从而扩大针对微生物的 ASO 化学空间,为精准操纵细菌群落和开发新型抗菌疗法提供支持。
材料与方法
- 材料准备:介绍实验所用的细菌菌株、培养基、PNAs 和肽共轭 PNAs(CPP-PNAs)的来源及处理方法。
- 体外转录:通过重叠聚合酶链反应(PCR)生成用于 T7 RNA 聚合酶介导的体外转录模板,然后进行体外转录,制备用于后续实验的 RNA。
- 体外翻译和蛋白质印迹:使用 PURExpress 体外蛋白质合成试剂盒进行体外翻译,通过蛋白质印迹检测翻译后的蛋白量,评估 PNA 介导的报告翻译激活情况。
- 构建翻译 TS7 报告质粒:从 Addgene 质粒扩增 TS7 序列,克隆到 pXG10-SF 载体中,构建不同荧光蛋白融合的报告质粒,并对 toehold switch 进行单核苷酸突变。
- CPP-PNA 处理细菌及检测:用 CPP-PNAs 处理细菌,在不同时间点检测荧光强度和细菌生长情况,通过流式细胞术和蛋白质印迹进一步分析。
- 最小抑菌浓度测定:采用肉汤微量稀释法测定 CPP-PNAs 的最小抑菌浓度(MIC)。