冷冻衍生各向异性多孔微粒:助力间充质干细胞治疗伤口愈合的新突破

【字体: 时间:2025年04月23日 来源:Research 8.3

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  为解决现有水凝胶支架结构简单、间充质干细胞(MSCs)移植效果不佳等问题,研究人员开展冷冻衍生各向异性多孔微粒(FAPMs)负载过表达肝细胞生长因子的 MSCsHGF促进伤口愈合的研究,结果显示该微粒可加速伤口愈合,在临床伤口治疗领域前景广阔。

  在医学领域,皮肤损伤的治疗一直是备受关注的难题。传统的治疗方法存在诸多局限,例如,基因编辑技术虽然能从基因层面进行干预,但操作复杂且存在潜在风险;再生医学尚处于不断探索阶段,很多技术还未成熟;基于干细胞的疗法中,间充质干细胞(MSCs)虽在伤口愈合过程中至关重要,可转化为多种细胞促进组织修复,然而其移植效果却不理想,较差的 MSCs 植入率严重阻碍了其在多种组织损伤治疗中的应用 。同时,现有的 MSCs 负载水凝胶组织工程支架,三维结构相对简单,缺乏有利于细胞黏附和生长的拓扑特征,而且常规 MSCs 分泌生长因子的能力有限,再加上结构设计和细胞承载能力的不足,这些都限制了其治疗效果和临床应用。
在这样的背景下,为了找到更有效的伤口愈合治疗方法,研究人员开展了深入研究。此次研究虽未明确研究机构所属地,但研究人员提出了一种创新的方案,即利用冷冻衍生各向异性多孔微粒(FAPMs)来负载过表达肝细胞生长因子(HGF)的间充质干细胞(MSCsHGF),以此促进伤口愈合,相关研究成果发表在《Research》上。这一研究成果意义重大,有望为临床伤口愈合治疗开辟新的途径。

研究人员在开展此项研究时,运用了多种关键技术方法。首先是微流控技术,通过精确控制流体和界面,将甲基丙烯酸化明胶(GelMA)前体分散成均匀的微滴,从而制备出单分散的 FAPMs。其次是冷冻光聚合技术,借助温度梯度使 GelMA 微滴定向冷冻,再经紫外线光交联和冷冻干燥,制得具有特定结构的 FAPMs。此外,还运用了细胞培养、ELISA 检测、体内伤口愈合实验以及多种染色技术(如苏木精 - 伊红染色、Masson 染色、免疫组化染色等)来评估微粒性能和治疗效果。

研究结果


  1. FAPMs 的制备与表征:通过微流控和定向冷冻铸造技术成功制备出 FAPMs,其具有各向异性微观结构。微流控技术可通过调节内外相流速精准控制微粒大小,所制备的微粒单分散性极佳,变异系数小于 5%。与传统冷冻干燥微粒相比,FAPMs 形态独特,呈不透明白色且结构完整,其孔径大小为 40 - 80μm,具有各向异性大孔和分支孔结构,而传统微粒孔径为 20 - 40μm 且孔形态随机。同时,研究发现温度梯度对 FAPMs 的孔形成影响显著,温度梯度越大,孔的取向性越强。
  2. FAPMs 对功能干细胞的负载能力:FAPMs 具有良好的生物相容性,与 NIH - 3T3 细胞共培养时,细胞增殖情况与对照组无明显差异,且溶血实验表明其血液相容性良好。MSCs 能够均匀且大量地负载在 FAPMs 上,并且在 FAPMs 上的增殖情况优于普通冷冻干燥微粒,这可能得益于 FAPMs 出色的孔隙率和较大的孔径。此外,经慢病毒转染获得的 MSCsHGF细胞活力更强,分泌 HGF 的能力也有所提高,其培养上清液中 HGF 和血管内皮生长因子(VEGF)含量均高于未转染组,这表明 MSCsHGF具有更强的旁分泌效应。
  3. MSCsHGF负载 FAPMs 的生物学功能:体外管形成实验表明,与其他组相比,FAPMs + MSCsHGF组能显著加速血管细胞网络的形成,促进血管生成,这得益于 MSCsHGF分泌的高水平 HGF 以及增强的旁分泌生长因子(如 VEGF)。在划痕实验中,来自 MSCsHGF条件培养基的 NIH - 3T3 细胞迁移率明显更高,这充分证明了 MSCsHGF过量分泌的 HGF 和 VEGF 对细胞迁移具有积极的促进作用。
  4. MSCsHGF负载 FAPMs 的体内治疗效果:在大鼠全层皮肤缺损模型实验中,FAPMs + MSCsHGF组伤口愈合速度最快,到第 11 天伤口闭合率高达 97.21% ± 2.39% 。组织病理学分析显示,该组肉芽组织扩张程度最小,组织再生和伤口修复效果最佳。免疫组化染色结果表明,FAPMs + MSCsHGF组炎症反应最轻,能有效促进巨噬细胞向 M2 表型极化,增加 M2 巨噬细胞数量。Masson 染色发现,该组伤口床胶原蛋白沉积更紧密,纤维结构更有序。免疫荧光染色显示,FAPMs + MSCsHGF组伤口部位新生血管数量最多,进一步证实了其在促进伤口愈合方面的显著效果。

研究结论与讨论


本研究成功开发了一种创新系统,利用 FAPMs 高效递送 MSCsHGF,显著提升了伤口愈合效果。FAPMs 独特的各向异性多孔结构,使其能够无损捕获并大量递送 MSCsHGF。MSCsHGF在 FAPMs 支架内可增殖、迁移,并持续分泌 HGF,进而促进细胞迁移和血管再生,增强血管生成,极化巨噬细胞向 M2 表型转化,减轻炎症反应,有效提高了皮肤伤口的修复效率。研究结果充分表明,MSCsHGF负载的 FAPMs 在促进伤口床血管化、组织再生和胶原蛋白沉积方面表现卓越,在伤口愈合领域具有巨大的应用潜力,有望为临床伤口治疗提供新的有效策略,推动该领域的进一步发展。

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