Kurthia gibsonii TYL-A1 高效降解泰乐菌素:性能、途径与基因组学研究 —— 为环境抗生素污染治理带来新希望

【字体: 时间:2025年04月30日 来源:Microbiology Spectrum 3.7

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  泰乐菌素(TYL)污染备受关注。本文分离出Kurthia gibsonii TYL-A1 菌株,其能高效降解 TYL。研究剖析了降解性能、产物、毒性、基因组等,揭示了降解机制,凸显该菌株在环境修复中的潜力,为治理抗生素污染提供新思路。

  

泰乐菌素污染现状与研究背景


抗生素在水产养殖和医学领域广泛应用,用于抗菌和促进生长。中国是全球最大的兽用抗生素消费国,2017 年全球兽用抗生素使用量达 9309 吨,预计到 2030 年将增至 104079 吨。泰乐菌素(TYL)作为一种大环内酯类兽用抗生素,常被用于治疗畜禽支原体疾病。但由于抗生素的滥用和其结构稳定性,大量未灭活的抗生素随粪便排出,造成环境污染。在墨西哥猪场,每千克猪通过废水向环境中释放约 284.3μg 的 TYL ,在肉鸡、奶牛和猪的粪便中也能检测到 TYL。抗生素可通过食物等途径进入人体,在体内积累会引发器官过敏、免疫抑制等病理变化,还会影响生物系统和微生物群落,加速耐药病原体和耐药基因的形成。

目前,去除环境中抗生素的技术多样,包括吸附法、高级氧化法(如光催化氧化、臭氧氧化、过硫酸盐氧化等)、电化学方法、Fenton 氧化法以及生物修复方法(如植物修复和微生物降解)。其中,微生物降解因具有安全、有效、操作简便、特异性强且不易产生二次污染等优点,成为研究热点。然而,已知具有 TYL 降解能力的微生物较少,其降解机制也鲜见报道。本研究旨在筛选具有 TYL 降解功能的菌株,评估其降解性能和产物,对菌株进行全基因组测序,分析相关基因,为 TYL 降解提供生物资源和理论依据,并探索其在实际废水处理中的应用。

材料与方法


实验所用 TYL 购自上海源叶生物技术有限公司,甲醇和乙腈分别购自 Fisher Scientific Co,其他化学试剂均为分析纯。实验使用的培养基有矿物盐培养基(MSM)和 Luria-Bertani(LB)培养基。采用高效液相色谱法(HPLC)测定 TYL 残留,参照 Zhao 等人的色谱条件。

实验菌株 TYL-A1 从土壤中分离得到,经鉴定为Kurthia gibsonii TYL-A1。将其接种到新鲜胰蛋白胨大豆肉汤(TSB)中复苏,经离心、洗涤后调整菌液浓度用于后续实验。通过单因素实验,研究不同氮源、初始 TYL 浓度、培养温度、初始 pH、细菌接种量和金属离子对 TYL 降解的影响。

基于单因素优化实验结果确定最佳培养条件,绘制降解动力学曲线,拟合 ln (Ct/C0) 与时间(t,h)的关系,分析降解动力学。根据公式计算降解速率常数(k)和半衰期(t1/2)。

利用 Biolog 生态板评估 TYL-A1 对不同碳源的利用模式,在板中添加 TYL 使其终浓度为 0 或 75mg/L,在 30°C 避光培养,连续 10 天用酶标仪在 590nm 处监测颜色变化,计算平均孔颜色发展(AWCD),判断碳源利用程度。

将 TYL-A1 菌悬液在无机盐培养基中培养后离心,分别获取上清液(含胞外酶)和菌体沉淀(破碎后获取胞内酶)。将胞内、胞外酶制剂分别加入含 75mg/L TYL 的 PBS 中,在最佳条件下反应,用 HPLC 测定 TYL 残留浓度,判断酶的降解作用。

将 TYL-A1 菌悬液接种到含 75mg/L TYL 的培养基中培养,分别在 12 小时和 4 天取样。经萃取、复溶后,采用液相色谱 - 质谱联用仪(LC-MS)分析降解产物,质谱采用电喷雾电离正离子模式,参考 Li 等人的色谱条件。

大肠杆菌金黄色葡萄球菌为测试菌株,设置阳性对照组(PC,不含 TYL 的 MSM)、阴性对照组(NC,含 75mg/L TYL 的 MSM)和生物降解产物组(TC,含 TYL-A1 降解 TYL 5 天后的上清液)。向各组加入等量菌悬液,在 37°C 培养,设置 3 个重复,通过测定 600nm 处吸光度评估细菌生长情况,分析降解产物毒性。

将 TYL-A1 接种到 TSB 培养基中培养至对数生长期,离心收集菌体,经洗涤后提取基因组 DNA。利用 Nanopore PromethION 平台和 Illumina NovaSeq PE150 进行全基因组测序,使用 Unicycler 软件进行基因组组装,GeneMarkS 软件预测基因,通过 Nr、SwissProt、COG、KEGG 和 GO 等数据库进行注释,用 Circos 软件绘制基因组图谱。

采集新鲜未发酵的牛粪废水,经固液分离、静置、过滤、稀释、灭菌后,分为实验组(添加 TYL-A1 菌悬液)和对照组(不添加菌株但含金属离子),每组设置 3 个重复,研究 TYL-A1 对废水中 TYL、化学需氧量(COD)、氮(N)和磷(P)含量的影响。

结果与讨论


不同氮源对 TYL 降解影响显著,酵母浸出粉作氮源时降解率最高,达 74.74%,因此将 MSM 中的氮源替换为酵母浸出粉。随着初始 TYL 浓度升高,降解率下降。TYL-A1 能完全降解 50mg/L 的 TYL,75mg/L 时降解率为 72.78% ,但 100mg/L 和 125mg/L 时仅为 19.57% 和 10.31% ,高浓度 TYL 可能抑制菌株生长。

温度和 pH 对 TYL 降解影响明显。30°C 时降解效率最高,达 74.09% ,温度过高或过低都会降低降解效率。pH 7 时 TYL-A1 降解效率达 70% ,在 pH 5 - 9 范围内菌株能保持有效降解能力,过酸或过碱环境虽会促进 TYL 自然降解,但不利于菌株生长和代谢。接种量在 1% - 3% 时,降解率随接种量增加而升高,3% 接种量时降解率达 99.71% ,超过 3% 后降解率无显著变化,考虑成本,选择 3% 接种量进行后续实验。在最佳条件(30°C,pH 7.0,3% 接种量)下,5 天后 TYL 降解率达 99.68%。与之前报道的菌株相比,TYL-A1 降解性能更优。通过一级动力学方程拟合,TYL-A1 降解 TYL 的回归系数(R2)为 0.9417,半衰期为 0.8862 天(约 21 小时),远低于之前报道的 TYL 在粪便中的半衰期(4 - 8 天),表明 TYL-A1 能显著加速 TYL 降解。

研究金属离子对 TYL-A1 降解 TYL 的影响发现,Fe2+、Ca2+、Zn2+、Mn2+、Cu2+和 Fe3+等金属离子对降解无显著影响(P>0.01)。其中,Ca2+在 2 - 3 天内显著加速降解(P<0.01),2 天内降解率达 94.5% ,可能是因为 Ca2+通过共代谢促进降解,维持细菌渗透压和酶活性。Zn2+对降解有抑制作用,但不显著。这表明 TYL-A1 能适应金属和抗生素共污染环境,未来可研究其对金属离子的降解能力。

添加 TYL 会影响 TYL-A1 的 AWCD 值,表明其碳源利用和代谢活性降低。在含 TYL 条件下,TYL-A1 对羧酸类碳源利用能力最强,其次是糖类,对聚合物和酚酸类利用较少。丙氨酸甲酯和 D - 木糖分别是羧酸类和糖类中利用率最高的碳源,可考虑作为共底物增强 TYL 生物降解。

研究发现胞内酶降解 TYL 的效率高于胞外酶,降解率分别为 80.438% 和 46% 左右。参与 TYL 降解的主要酶可能是大环内酯失活酶、水解酶和氧化还原酶,且多为胞内酶,但具体酶种类和作用机制有待进一步研究。

通过 LC-MS 分析 TYL-A1 降解 TYL 的中间产物,鉴定出底物 TYL 及两种潜在代谢产物 T1 和 T2。推测其降解途径为:TYL-A1 先作用于霉素糖产生 T1,T1 再失去糖基、水解酯键、发生氧化反应,形成小分子物质 T2。该降解途径与之前报道有所不同,产物结构更小。

毒性分析表明,TYL-A1 降解产物对大肠杆菌金黄色葡萄球菌的生长抑制作用明显低于 TYL 本身,说明降解产物毒性显著降低,微生物降解在降低 TYL 环境毒性方面具有优势。

TYL-A1 基因组测序结果显示,其染色体为环状,序列长度 3028232bp,GC 含量 36.67% ,有 3027 个编码基因;质粒长度 52604bp,GC 含量 35.17% ,有 61 个编码基因。通过数据库注释分析,发现该菌株功能丰富,代谢和催化活性强。KEGG 分析表明,与萜烯、聚酮和糖代谢相关的基因可能参与 TYL 生物降解,24 个基因参与异源生物降解和代谢途径,说明 TYL-A1 还能降解其他有机污染物。CAZy 数据库分析显示,菌株含有多种与碳水化合物相关的基因,如糖苷水解酶(GHs)和糖基转移酶(GTs),可能在 TYL 降解中发挥重要作用。此外,TYL-A1 基因组中含有多种抗生素耐药基因(ARGs),对多种抗生素具有耐药性,对 TYL 的耐药归因于大环内酯耐药基因mtrAefrBvmlRMexDErmBmphB等,其中mphB通过编码 2′ - 磷酸转移酶使大环内酯类抗生素失活。

将 TYL-A1 应用于奶牛场废水处理实验,结果显示,废水中 TYL 降解率在 3 天内迅速上升至 47% ,8 天后达到 80% ,10 天后为 86.19% ,低于在 MSM 中的降解率,这可能是因为废水环境复杂,影响菌株生长和酶活性,且存在碳代谢物抑制作用。添加 TYL-A1 后,废水中 COD、总氮(TN)和总磷(TP)含量均有所降低,实验结果表明 TYL-A1 在水产养殖废水处理中具有潜在应用价值。

研究结论


本研究从 TYL 污染土壤中分离出高效降解菌株Kurthia gibsonii TYL-A1,该菌株对 TYL、温度、pH 和金属离子具有耐受性,能显著缩短 TYL 半衰期。胞内和胞外酶共同参与 TYL 降解过程,基于 LC-MS 分析提出了新的生物代谢途径。全基因组测序揭示了参与 TYL 降解的相关基因,为理解 TYL 降解机制提供了依据。本研究为 TYL 污染环境的生物修复提供了重要的微生物种质资源,有望为治理环境中的抗生素污染开辟新途径。

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