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综述:急性髓系白血病中CAR T细胞靶点识别的新方法
《Current Opinion in Pharmacology》:Novel approaches to CAR T cell target identification in acute myeloid leukemia
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年05月07日 来源:Current Opinion in Pharmacology 4.0
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(编辑推荐)本综述系统探讨了急性髓系白血病(AML)CAR T细胞治疗靶点发现的创新策略,涵盖结构表面组学(structural surfaceomics)、AI驱动的单细胞RNA测序(scRNA-seq)及表面蛋白组学技术,旨在解决靶点异质性和脱瘤毒性难题,为AML免疫治疗提供新蓝图。
嵌合抗原受体(CAR)T细胞疗法通过改造T细胞使其表达靶向肿瘤相关抗原(TAA)的合成受体,已在B细胞恶性肿瘤中取得突破。然而,急性髓系白血病(AML)因与正常造血干细胞(HSPC)共享抗原且高度异质,靶点开发面临巨大挑战。
CD19和BCMA(B细胞成熟抗原)靶向CAR T在B细胞急性淋巴细胞白血病(B-ALL)和多发性骨髓瘤(MM)中展现出显著疗效。尽管存在B细胞耗竭等脱瘤效应,但可通过静脉免疫球蛋白(IVIG)替代治疗管理,为AML靶点选择提供了安全阈值参考。
传统单克隆抗体技术鉴定的CD33和CD123靶点因在HSPC广泛表达,导致治疗窗口狭窄。双特异性抗体如flotetuzumab(抗CD123/CD3)虽有一定疗效,但细胞因子释放综合征(CRS)和骨髓抑制风险限制了应用。
K?hnke团队通过生物素标记联合质谱技术,在原发性AML样本中鉴定出CD148、ITGA4(整合素α4)等新靶点,避免了抗体预筛选的局限性。
Mandal等利用交联质谱(XL-MS)捕获整合素β2的肿瘤特异性“开放激活”构象,构建的CAR T在PDX模型中显示优于CD33 CAR的安全性。
Perna团队结合表面蛋白组与转录组数据,筛选出ADGRE2、CD70等靶点,并通过组合靶向策略增强特异性。
Gottschlich开发的算法分析scRNA-seq数据,发现CSF1R和CD86在AML中高表达且健康组织表达极低,临床前模型验证其安全性。
Bordeleau等对100例AML样本进行表面蛋白组分析,鉴定出MILR1、CTSG等泛AML靶点及CD34+ LSC标志物NPR3,为精准分型治疗奠定基础。
从构象特异性靶点到AI驱动的多组学筛选,新技术正重塑AML免疫治疗格局。尽管克隆异质性和毒性风险仍需攻克,组合靶向和基因编辑(如CRISPR/Cas9)的融合策略,将推动CAR T疗法向更安全、更精准的方向演进。