组蛋白与抗菌肽协同杀菌:开启新型抗生素策略之门

【字体: 时间:2025年05月08日 来源:Cell Reports 7.5

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  本文聚焦组蛋白(histones)与抗菌肽(AMPs),发现二者协同可在细菌膜上形成 26nm 大孔,显著增强抗菌效果。这一机制为理解先天免疫提供依据,有望开发新型抗生素策略,对抗日益严重的耐药问题。

  

研究背景


组蛋白作为真核生物的蛋白质,80 多年前就被发现具有抗菌作用,但之后更多地被研究其在染色体 DNA 浓缩和转录调控方面的功能。在哺乳动物先天免疫中,组蛋白与抗菌肽(AMPs)共定位,参与中性粒细胞胞外陷阱(NETs)和脂滴相关过程 。不过,组蛋白与 AMPs 协同抗菌的机制以及组蛋白形成膜孔的情况尚不明确。

AMPs 如人源 LL-37、细菌源多粘菌素 B(PMB)和 E(粘菌素)等可在革兰氏阴性菌外膜形成孔道。LL-37 形成环形孔道,PMB 和粘菌素则靶向脂多糖(LPS)并使其重排为刚性晶体结构。组蛋白 H2A 能增加 LL-37 进入细菌细胞质,但具体机制未知。而且,组蛋白在生理离子浓度下活性较低,单独作用时似乎无法启动膜孔形成,其在低离子条件下虽有抗菌活性,但如何穿过细菌内膜进入细胞质也不清楚。本研究以铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)和大肠杆菌(Escherichia coli)为对象,探究组蛋白 H2A 的成孔活性。

研究结果


  1. 组蛋白 H2A 增强 PMB 的抗菌活性:体外实验中,用亚最小抑菌浓度(MICs)的 PMB(0.5μg/mL,3.2μM)、组蛋白 H2A(10μg/mL,0.7μM)单独或联合处理大肠杆菌 1 小时后,发现单独处理时,PMB 或 H2A 仅适度降低菌落形成单位(CFUs),而联合处理使 CFUs 降低超 7 个数量级,且在液体培养中完全抑制细菌生长,其抗菌效果强于卡那霉素、庆大霉素和四环素 。对铜绿假单胞菌的实验结果类似,联合处理可使 CFUs 降低超 5 个数量级,抑制生长达 15 小时,棋盘法检测显示二者联合的分数抑菌浓度(FIC)指数分别为 0.16 和 0.19,表明具有强协同作用。

体内实验中,在蜡蛾幼虫感染模型中,感染铜绿假单胞菌后,单独注射 H2A 或磷酸盐缓冲盐水(PBS)的幼虫 24 小时后全部死亡,单独注射 PMB 使 22% 的幼虫存活至 24 小时,而联合注射 PMB 和 H2A 的幼虫至少存活 5 天,与庆大霉素处理组相当。在小鼠角膜感染模型中,感染铜绿假单胞菌后,单独用 H2A 或 PMB 处理的小鼠角膜混浊程度与未处理组无显著差异,而联合处理组角膜疾病明显减轻,细菌数量显著减少,效果与庆大霉素处理组相似 。
2. H2A 与 PMB 联合导致细菌外膜和内膜形成孔道:利用低温透射电子显微镜(cryoEM)观察细菌膜结构,发现联合处理 30 分钟后,铜绿假单胞菌外膜出现明显破坏,每个细胞外膜最多可检测到 7 个平均直径 22.1nm 的孔,大肠杆菌外膜最多有 15 个平均直径 25.8nm 的孔,且部分孔贯穿外膜和内膜 。而未处理细胞或单独用 H2A、PMB 处理的细胞未观察到孔或明显膜变形。常规透射电子显微镜(TEM)检测结果也支持联合处理可导致膜孔形成。
3. 孔道增加分子运输和 H2A 定位:用碘化丙啶(PI)、荧光标记的葡聚糖和荧光标记的 H2A 检测膜通透性。结果显示,PMB 单独处理可增加大肠杆菌细胞质中 PI 荧光,表明其增加了外膜和内膜的通透性;H2A 单独处理无此效果,但二者联合使 PI 荧光增加 16 倍 。对于 150kDa 的荧光素异硫氰酸酯(FITC)标记葡聚糖,PMB 单独处理使其摄取增加 3 倍,联合处理增加 8 倍,表明联合处理显著增加了孔的大小和数量。

通过直接随机光学重建显微镜(dSTORM)跟踪荧光 H2A(AF647-H2A)的单分子定位,发现单独用 AF647-H2A 处理时,其主要结合在外膜;加入 PMB 后,AF647-H2A 计数显著增加,多数形成直径小于 50nm 的簇,平均直径为 18.7nm,且直径大于 110nm 的簇出现频率更高,说明 PMB 增加了 H2A 在细胞上的定位并促进其形成大簇 。
4. H2A 可透化内膜小叶和外膜的内膜小叶:用大肠杆菌原生质球评估 H2A 对内膜外小叶的成孔活性,发现 H2A 单独处理可使原生质球破裂,诱导快速 PI 摄取和膜通透性增加,而 PMB 单独处理在实验浓度下对 PI 摄取影响不显著 。将荧光 H2A(AF488-H2A)通过电穿孔导入大肠杆菌细胞质,发现细胞质中 AF488-H2A 荧光增加的同时,PI 摄取显著增加 23 倍,表明 H2A 从细胞内显著增加了内膜和外膜的通透性。
5. 脂多糖抑制 H2A 在外膜的成孔活性:在革兰氏阴性菌中,LPS 主要存在于外膜外小叶。研究发现,LPS 缺陷的大肠杆菌 ΔwaaC突变体对 H2A 的摄取显著增加,PI 荧光也略有增加,而野生型细胞无此现象。H2A 处理 ΔwaaC突变体可延迟其指数生长,高浓度时完全抑制生长,而对野生型菌株生长影响较小,表明 LPS 抑制了 H2A 的膜透化活性和生长抑制作用 。
6. 抗菌协同作用源于对膜的正交活性:基于实验结果提出 AMPs 与组蛋白协同作用模型,即 AMPs 透化外膜,使 AMPs 和组蛋白进入周质空间,组蛋白进而透化外膜内膜小叶和内膜外小叶 。通过理论模型模拟发现,当组蛋白和 AMPs 的活性正交时,协同作用增强,当组蛋白对 LPS 表面活性低、对非 LPS 表面活性高时,协同作用最大,PMB 与 H2A 的组合接近协同峰值 。

评估 H2A 与 LL-37 的协同作用,发现二者联合处理大肠杆菌产生的 FIC 指数为 0.27,使细菌活力降低 3 个数量级,抑制细菌生长时间比 LL-37 单独处理长 5 小时,产生 17.0nm 的圆形膜变形,H2A 形成平均直径 19.5nm 的簇,部分直径≥110nm,表明 LL-37 与 H2A 的协同机制与 PMB 类似 。在 ΔwaaC突变体中,PMB 与 H2A 对其外膜外小叶的活性重叠,协同作用消失,FIC 指数为 0.63,表现为相加作用而非协同作用。

讨论


本研究表明组蛋白 H2A 可透化除含有 LPS 的外膜外小叶之外的所有膜表面,单独的组蛋白比 AMPs 具有更强的成孔活性,生理离子条件下组蛋白活性受 LPS 抑制 。AMPs 与组蛋白的组合通过在所有膜表面形成孔道,构成一种强大的抗菌机制。PMB 与 H2A 形成的 26nm 孔道比其他 AMPs 形成的孔道大得多,可能是 PMB 形成的小孔使 H2A 进入周质空间,进而在内部膜上形成大孔 。

协同抗生素组合研究意义重大,本研究为 AMPs 与组蛋白的协同作用提供了机制解释,即源于对 LPS 和非 LPS 膜的正交靶向 。虽然 LL-37 与 H2A 的协同指数和杀菌活性低于 PMB 与 H2A 组合,但二者都符合正交膜靶向模型。组蛋白除形成膜孔外,还可重组细菌基因组 DNA,抑制转录和复制,AMPs 与组蛋白的组合可从多个方面攻击细菌 。

PMB 与 H2A 的协同抗菌活性在临床治疗革兰氏阴性菌感染中可能有效,使用组蛋白或类似作用分子与多粘菌素联合,可提高抗生素疗效,降低多粘菌素浓度,减少其神经毒性和肾毒性 。此外,其他 AMPs 与组蛋白也可能存在类似协同作用,正交靶向有望成为有效抗菌策略,减缓抗生素耐药危机。

研究局限性


本研究仅针对全长组蛋白 H2A 与 PMB、LL-37 的协同作用,H2A 的 N 端虽有成孔活性,但不确定其单独是否足以产生协同效应,其他组蛋白(H1、H2B、H3 和 H4)及组蛋白衍生肽与 PMB 或其他 AMPs 是否存在协同作用也有待研究 。本研究仅在大肠杆菌和铜绿假单胞菌中观察到抗菌效果,革兰氏阴性菌的 LPS 结构和膜性质多样,需进一步研究 H2A 与 PMB 的协同效应是否适用于其他革兰氏阴性菌 。在革兰氏阳性菌中,细胞壁生理结构不同,可能限制 H2A 与 PMB 的协同作用,其协同情况也需进一步探究 。

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