跨菌种荧光标记穿梭载体的构建与应用:pKEK-Chrom质粒系列在非模式革兰氏阴性菌中的多功能表达系统

【字体: 时间:2025年05月13日 来源:Applied and Environmental Microbiology 3.9

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  本研究开发了32种pKEK-Chrom穿梭质粒,整合8种发色团蛋白(CCPs)、可替换启动子(BsaI介导的Golden Gate组装)及双复制子(p15a-FnOri/RSF1010),解决了非模式菌(如Francisella novicida、Acinetobacter baumannii)中基因工具匮乏的难题。通过启动子交换和广宿主复制策略,实现在Escherichia coli、Vibrio alginolyticus等5类革兰氏阴性菌中的高效荧光标记,为微生物研究提供模块化工具包。

  

跨菌种荧光标记穿梭载体的创新设计与验证

ABSTRACT
发色团蛋白(CCPs)包括荧光蛋白和非荧光显色蛋白,已成为微生物研究的关键工具。然而,在缺乏成熟遗传系统的非模式细菌中应用CCPs面临转化效率、复制子兼容性和启动子选择等挑战。研究团队构建了32种pKEK-Chrom穿梭质粒,包含8种CCPs(如eforCP、DasherGFP、tsPurple)、双抗生素标记(KanR/CmR)和两种复制子(p15a-FnOri或RSF1010-p15a),并通过BsaI位点实现启动子(pJ23100)的Golden Gate交换。该系统在Escherichia coli、Shewanella oneidensis等5种革兰氏阴性菌中验证了功能,显著拓展了CCPs的应用范围。

INTRODUCTION
自维多利亚水母GFP发现以来,CCPs家族已衍生出多种光谱特性的成员。但非模式菌的遗传异质性(如Francisella的RNA聚合酶特异性)限制了传统载体的适用性。研究以Francisella novicida和Acinetobacter baumannii为模型,针对复制子稳定性(FnOri/RSF1010)和启动子兼容性(pJ23100-BsaI)进行工程化改造,建立标准化表达工具。

MATERIALS AND METHODS
载体构建采用Golden Gate组装技术,CCP基因片段通过BsaI-HFv2酶切连接至含p15a-FnOri-oriT或RSF1010-p15a的骨架。启动子交换通过含CGAC/ATTA粘末端的pGroEL-PCR片段实现。功能验证涵盖E. coli(37°C)、Vibrio alginolyticus(30°C高盐培养基)等菌株的荧光显微成像和接合转移实验。

RESULTS

  1. 多宿主兼容性验证
    在E. coli中,所有CCPs均显色,其中sfGFP/DasherGFP在绿光通道(470 nm激发)表现最佳,而sfCherry2在红光通道(390 nm激发)特异性最强。V. alginolyticus中仅sfCherry2和DasherGFP稳定表达,凸显宿主代谢对CCP活性的影响。

  2. 启动子交换技术
    通过BsaI酶切将Francisella特异性pGroEL启动子替换pJ23100后,F. novicida中sfGFP表达量提升20倍(荧光显微镜定量)。值得注意的是,温度敏感型aeBlue在30°C下显色微弱,印证其热不稳定性。

  3. 广宿主复制子优化
    RSF1010载体在A. baumannii中成功表达6种CCPs(除FuGFP),其天然oriT元件使接合效率达10-3/供体细胞。相比之下,p15a-FnOri在该菌中完全失效,证实RSF1010对γ-变形菌纲的广谱适应性。

DISCUSSION
pKEK-Chrom系列通过模块化设计解决了三大瓶颈:

  • 遗传工具匮乏:双复制子策略覆盖90%测试菌株
  • 表达调控障碍:BsaI位点支持72小时内完成启动子高通量筛选
  • 技术兼容性:IP-free的DasherGFP/tsPurple降低商业授权限制

在Francisella中,pGroEL驱动sfGFP的荧光强度达E. coli水平的60%,为胞内病原体研究提供新工具。未来可扩展至CRISPRi等动态调控系统,进一步推动非模式菌的合成生物学应用。

技术亮点

  • 首创将tsPurple用于蓝白筛选替代方案
  • RSF1010在A. baumannii的稳定维持率>95%(50代)
  • 接合转移效率突破10-2(S. oneidensis)

该研究为微生物群落分析、病原体追踪等场景提供了标准化解决方案,相关质粒已存放Addgene(ID 234085-234108)。

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