人诱导多能干细胞来源的 CD157?血管内皮细胞具有高血管生成潜力

【字体: 时间:2025年05月15日 来源:Inflammation and Regeneration 5

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  【研究推荐】为明确人类血管内皮干细胞(ECSCs)是否存在及 CD157?细胞的血管生成潜力,研究人员利用人诱导多能干细胞(iPSCs)分化为血管内皮细胞,发现 CD157 表达在分化第 14 天达峰值,且 CD157?细胞血管生成能力显著更强。该研究为血管再生治疗提供新方向。

  

研究背景与意义


血管在机体氧气、营养运输及免疫细胞递送中扮演核心角色,血管内皮细胞通过分泌血管 ocrine 因子维持器官稳态与组织再生。血管生成(Angiogenesis)作为从已存血管生成新血管的过程,对伤口愈合、妊娠等至关重要。内皮干细胞(Endothelial Stem Cells, ESCs)被认为是具有自我更新和多向分化能力的特殊群体,其高增殖特性赋予强大的血管生成潜力,在缺血性疾病和器官再生中展现出巨大临床潜力。

在小鼠研究中,研究团队已发现 CD157?血管内皮细胞具有干细胞特性,可在肝血管紊乱和后肢缺血模型中持续构建血管。然而,人类是否存在类似的内皮干细胞,以及 CD157 是否可作为人类内皮干细胞的标记物,一直未明确。此外,传统使用的人脐静脉内皮细胞(HUVECs)多为 CD157?且移植能力有限,而人类组织来源的内皮细胞面临伦理、成本和培养难题。因此,利用人诱导多能干细胞(iPSCs)构建血管内皮细胞分化模型,探究 CD157?细胞的功能,成为破解人类血管再生机制的关键。

日本大阪大学(The University of Osaka)的研究团队在《Inflammation and Regeneration》发表研究,通过人 iPSCs 分化体系,系统分析了 CD157?血管内皮细胞的特性,证实其高血管生成潜力,为血管再生治疗提供了新的细胞靶点和理论依据。

关键技术方法


  1. 细胞培养与分化:利用 MiraCell iPS 细胞向内皮细胞分化试剂盒,将人 iPSCs(UTA-SF2-2 细胞系)诱导分化为血管内皮细胞,在不同时间点(第 4、8、11、14、20、24 天)收集细胞用于后续分析。
  2. 分子与细胞生物学检测:通过定量逆转录 PCR(qRT-PCR)检测多能性标记(OCT3/4、SOX2)、中胚层标记(TBXT1)、内皮祖细胞标记(VEGFR2)及 CD157 的基因表达;利用流式细胞术(Flow Cytometry)和荧光免疫染色分析细胞表面抗原(CD31、CD45、CD157)的表达。
  3. 功能验证实验
    • 管形成实验(Tube Formation Assay):评估 CD157?与 CD157?细胞在 Matrigel 上形成血管样结构的能力。
    • 后肢缺血模型(Hind Limb Ischemia Model):将 CD157?/?细胞移植到缺血小鼠后肢,通过激光多普勒血流成像(LDBF)和免疫荧光染色检测血管再生能力。

  4. 转录组分析:对分化第 11、14、24 天的细胞进行 RNA 测序(RNA-seq),筛选差异表达基因(DEGs)并进行基因本体论(GO)功能富集分析。

研究结果


1. 人 iPSCs 向血管内皮细胞的分化进程


  • 形态学观察:分化第 2 天细胞呈多能干细胞样扁平集落,第 14 天出现典型内皮细胞鹅卵石样形态,第 24 天细胞体积增大,提示成熟。
  • 基因表达动态:多能性标记(OCT3/4、SOX2)在分化早期(第 0、4 天)高表达,中胚层标记 TBXT1 在第 4 天显著上调,内皮祖细胞标记 VEGFR2 在第 11 天达峰值,内皮细胞标记 CD31 和 VEGFR1 分别在第 8 天和第 11 天高表达。CD157 基因在第 14 天表达量最高,随后下降,提示其与内皮细胞成熟阶段相关。

2. CD157?细胞的动态表达与干细胞特性


  • 流式细胞术分析:CD157?细胞比例在第 14 天达 86.1%,第 24 天降至约 10%;CD31?/CD45?细胞群体纯度高,排除血细胞污染。
  • 荧光免疫染色:第 14 天大部分细胞 CD157 阳性,第 24 天阳性细胞减少,与基因表达趋势一致。
  • ABC 转运蛋白表达:CD157?细胞(第 14 天)中 ABCG2(ATP 结合盒转运蛋白)表达显著高于 CD157?细胞,提示其具有干细胞的药物外排能力。

3. CD157?细胞的血管生成能力增强


  • 管形成实验:第 14 天 CD157?细胞形成的血管样结构更厚,节点、分支数和总长度均显著高于第 24 天 CD157?细胞,表明其体外血管生成能力更强。
  • 体内移植实验:在小鼠后肢缺血模型中,移植第 14 天 CD157?细胞的缺血肢体血流恢复更佳,人 CD31?内皮细胞的定植率显著高于 CD157?细胞组,证实其体内血管再生能力。

4. 转录组分析揭示 CD157?细胞的分子特征


  • 差异基因筛选:与 CD157?细胞相比,CD157?细胞中血管生成相关基因(如 Tie2(TEK)、APJ(APLNR)、VEGFC、NRP2)及干细胞相关基因(ENPP2、CYP1B1)显著上调。
  • 功能富集分析:CD157?细胞富集 “血管形态发生”“血管生成”“细胞增殖” 等生物学过程,而 CD157?细胞相关通路活性降低,进一步支持 CD157?细胞的未分化状态和血管生成潜力。

研究结论与讨论


本研究通过人 iPSCs 分化模型证实,CD157?血管内皮细胞具有高血管生成潜力,其分子特征与小鼠内皮干细胞相似,可能作为人类血管内皮干细胞(ECSCs)的候选群体。关键发现包括:

  1. CD157 表达在人 iPSCs 来源的内皮细胞中呈阶段性升高,峰值出现在分化第 14 天,与血管生成能力正相关。
  2. CD157?细胞高表达 ABC 转运蛋白(ABCG2)和血管生成相关基因(Tie2、APJ 等),提示其干细胞特性和血管再生功能。
  3. 体内外实验均证实 CD157?细胞的血管生成能力显著强于 CD157?细胞,为缺血性疾病(如心肌缺血、外周动脉疾病)的细胞治疗提供了新方向。

尽管体外培养条件下 CD157?细胞的维持时间较短,可能与缺氧环境缺失或生长因子差异有关,但该研究首次在人类细胞中验证了 CD157 作为内皮干细胞标记物的潜力。未来研究需进一步探索体内微环境对 CD157?细胞干性的调控机制,并优化其分离和扩增方法,以推动临床转化。

该研究不仅拓展了对人类血管内皮细胞异质性的认识,也为血管再生医学提供了极具前景的细胞靶点,有望开启基于内皮干细胞的新型治疗策略。

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