母猪微生物组对仔猪肠道菌群的持久影响：从哺乳期到断奶期的动态变化研究

为解决早期肠道菌群定植对仔猪健康的影响问题，比利时根特大学的研究团队通过16S rRNA基因测序技术，分析了18对母猪-仔猪在哺乳期至断奶后10天的直肠菌群动态。研究发现，母猪微生物组对仔猪肠道菌群多样性（α/β多样性）和组成具有显著且持久的塑造作用，断奶后环境（栏舍同伴）贡献率达53.54%。该研究为通过母源微生物干预优化仔猪健康提供了理论依据，对减少抗生素使用和替代氧化锌方案具有重要意义。

　　

在养猪业和生物医学研究中，猪的健康至关重要。肠道菌群平衡直接影响免疫发育、代谢功能和病原体抵抗能力，而早期菌群定植的质量可能决定动物终生健康。然而，哺乳期到断奶阶段的菌群动态仍存在诸多未解之谜：母源微生物如何影响后代？断奶应激如何改变菌群结构？这些问题的解答对解决仔猪腹泻、生长迟缓等生产难题具有迫切意义。

比利时根特大学的研究团队在《Animal Microbiome》发表了一项开创性研究。Alessandra Tancredi等学者通过对18对母猪-仔猪进行纵向采样（出生后7天至断奶后10天），结合16S rRNA基因测序和FEAST溯源分析，首次系统揭示了母源微生物对仔猪肠道菌群的持久影响机制。研究发现，母猪贡献了仔猪7日龄时31.68%的肠道菌群，且这些菌株能持续存在至断奶后；断奶后栏舍同伴的菌群交换贡献率高达53.54%，显著重塑微生物组成。

研究采用三大关键技术：1）多时间点纵向采样设计（涵盖哺乳期和断奶过渡期）；2）16S rRNA基因V3-V4区高通量测序与DADA2算法解析菌群特征；3）FEAST模型量化母源与环境菌群贡献率。通过线性混合模型和PERMANOVA分析，团队揭示了影响菌群动态的关键因素。

微生物多样性受年龄和母源双重调控
α多样性分析显示，仔猪菌群丰富度随日龄增长而提升（p<0.001），断奶后趋于稳定。母猪个体差异解释6.2%的α多样性变异，而断奶后栏舍环境贡献14.5-16%的变异。β多样性分析中，母猪影响在断奶前占50-60%，断奶后栏舍效应上升至24.6%。

断奶引发菌群结构剧变
Prevotellaceae在断奶后取代Bacteroidaceae成为优势菌科（p<0.001），与植物多糖代谢相关的Prevotella_9成为最丰富菌属。功能预测显示，断奶后甲烷生成通路（MF0099）活性增强，而糖胺聚糖降解通路（MF0052）减弱，提示菌群适应固体饲料的代谢转变。

母源菌株的持久定植
ASV水平分析鉴定出72个母源传递菌株，包括乳酸杆菌（Lactobacillus acidophilus）等有益菌和产气荚膜梭菌（Clostridium sensu stricto 1）等条件致病菌。这些菌株61.23%能持续存在至断奶后10天，证实母源微生物的长期定植能力。

该研究首次量化了母猪与栏舍环境对仔猪菌群的时空贡献规律，为精准调控早期菌群提供了科学依据。母源传递的有益菌（如SCFA生产者）可作为益生菌开发靶点，而断奶后栏舍效应的发现则提示群体管理的重要性。研究提出的"菌群继承而非更替"模型，革新了对仔猪肠道发育的认知，为替代抗生素策略开辟了新思路。