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氟喹诺酮类药物敏感性变异机制研究:单核细胞增生李斯特菌FepR与ParC突变在耐受性形成中的作用
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年06月04日 来源:International Journal of Food Microbiology 5.0
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本研究针对单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes)对氟喹诺酮类药物的敏感性变异问题,通过分析88株加拿大乳制品来源菌株的基因组特征与表型变化,首次揭示了fepR基因移码突变导致的FepA二聚化缺陷和parC基因错义突变引发的拓扑异构酶IV结构改变,是菌株在亚致死浓度环丙沙星(CIP)暴露下产生交叉耐药的关键机制。该成果为食源性病原体耐药性监测提供了新靶点,发表于《International Journal of Food Microbiology》。
在食品安全领域,单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes)作为高致死率的食源性病原体,其对抗生素的敏感性变化始终是公共卫生关注的焦点。氟喹诺酮类药物(Fluoroquinolones)如环丙沙星(Ciprofloxacin, CIP)、左氧氟沙星(Levofloxacin, LEV)和莫西沙星(Moxifloxacin, MOX)因其广谱抗菌特性被推荐为治疗选择,但近年来关于该菌株耐药性演变的预警信号逐渐显现。特别值得注意的是,亚治疗浓度抗生素暴露环境下细菌的适应性进化机制尚未明确,这为临床治疗和食品安全生产埋下隐患。
针对这一科学问题,加拿大研究团队对88株分离自乳制品设施的L. monocytogenes野生型菌株展开系统性研究。通过VITEK GP-AST75药敏检测和肉汤稀释法(Broth dilution assay)测定发现,尽管所有菌株对CIP、LEV和MOX均保持临床敏感(MIC≤1 ppm),但在0.5 ppm亚抑制浓度CIP压力下连续传代后,菌株WRLP81和WRLP86的后代表现出显著的适应性进化:WRLP81的CIP MIC值从1 ppm升至4 ppm,同时伴随LEV(2 ppm)和MOX(1 ppm)的交叉耐药;而WRLP86后代对LEV的MIC更飙升至4 ppm。这种快速表型变化提示可能存在新的遗传调控机制。
研究采用全基因组测序(Whole genome sequencing)技术锁定关键突变位点。在WRLP81衍生物81.2B和81.2C中,fepR基因(编码外排泵调控因子)发生两个独特的移码突变:V114fs导致第114位缬氨酸后的阅读框架移位,Glu139fs则在139位谷氨酸处引发提前终止。分子动力学模拟显示,这些突变使FepR蛋白丧失二聚化能力,进而无法有效抑制FepA外排泵的表达,导致抗菌药物被主动排出胞外。更引人注目的是,在WRLP86衍生物86.2C_2中发现的parC(S80Y)突变,首次证实了拓扑异构酶IV(Topoisomerase IV)的翼状螺旋结构域(Winged helix domain)变异可通过空间位阻效应干扰氟喹诺酮类药物与DNA-酶复合物的结合,这一发现为解释革兰氏阳性菌靶位修饰耐药机制提供了新视角。
关键技术方法包括:1)采用VITEK GP-AST75系统进行初始药敏筛查;2)通过肉汤微量稀释法(MHB培养基,0.125-8 ppm二倍梯度)验证MIC值;3)亚抑制浓度CIP(0.5 ppm)连续传代诱导耐药;4)全基因组测序结合生物信息学分析鉴定突变位点;5)同源建模预测蛋白结构变化。
研究结果可归纳为:
该研究的突破性在于揭示了单核细胞增生李斯特菌通过双轨制进化策略应对氟喹诺酮压力:既可通过fepR失活突变激活外排泵(Efflux pump)实现多药外排,又能经parC靶位修饰特异性降低药物结合效率。这一发现为解释细菌在低抗生素环境下的持续性进化提供了分子证据,对食品工业中消毒剂使用策略和临床给药方案制定具有双重指导意义。特别值得注意的是,研究强调现行临床折点(Clinical breakpoint)可能无法及时捕捉亚抑制浓度诱导的耐药性演变,建议将fepR和parC纳入耐药监测的分子标记体系。论文成果发表于《International Journal of Food Microbiology》,为食源性疾病防控提供了重要的理论基础。
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