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NAIL-MS技术揭示热应激下真核与原核生物tRNA U34修饰的关键调控机制
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年06月06日 来源:Journal of Molecular Biology 4.7
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为探究全球变暖背景下生物体tRNA修饰重编程的应激响应机制,研究人员采用NAIL-MS(核酸同位素标记耦合质谱)技术对5种模式生物(A. thaliana、S. cerevisiae、C. elegans、D. discoideum和E. coli)进行tRNA修饰组学分析。研究发现U34位点修饰(如mnm5 U和mcm5 s2 U)在热应激下发生特异性改变,揭示tRNA修饰通过调控新/旧tRNAs动态平衡参与热适应。该研究为理解非编码RNA表观遗传调控在环境应激中的作用提供新视角。
随着全球气候变暖加剧,高温胁迫已成为威胁生物生存的重要环境压力。在细胞层面,生物体如何通过分子机制适应温度变化是当前生命科学的研究热点。传统研究多聚焦于热休克蛋白等经典应激通路,而对tRNA这类"翻译适配器"的动态修饰调控知之甚少。tRNA作为蛋白质合成的关键元件,其化学修饰异常丰富,尤其在反密码子区第34位尿苷(U34)的修饰(如mcm5
U、mnm5
U等)被认为能通过"摆动配对"调控翻译保真度。虽然已有研究表明化学胁迫可诱导tRNA修饰重编程,但热应激下跨物种的tRNA修饰动态变化规律及其分子机制仍是未解之谜。
为系统解析这一问题,德国法兰克福大学等机构的研究人员开展了一项跨物种比较研究。通过NAIL-MS技术对5种代表性生物(植物拟南芥A. thaliana、酵母S. cerevisiae、线虫C. elegans、黏菌D. discoideum和大肠杆菌E. coli)进行tRNA修饰组学分析,发现U34修饰在热应激响应中具有进化保守的调控作用。该研究成果发表在《Journal of Molecular Biology》上,为理解非编码RNA表观遗传修饰在环境适应中的作用提供了新范式。
研究主要采用同位素稀释质谱(LC-MS/MS)进行绝对定量分析,结合创新的NAIL-MS技术区分新合成与原有tRNAs的修饰动态。通过SEC(尺寸排阻色谱)纯化tRNA,针对E. coli和S. cerevisiae开展脉冲追踪实验,并利用生物素化探针分离特定tRNA同受体(isoacceptors)。
稳态分析揭示物种特异性修饰谱
通过比较5种生物在正常条件下的tRNA修饰组,发现大肠杆菌的修饰丰度(1-5个修饰/100nt)显著低于真核生物。真核生物中普遍存在高丰度的二氢尿苷(D)和假尿苷(Ψ),而原核特有的mnm5
U和真核特征的mcm5
s2
U均定位于U34位点。拟南芥展现出独特的修饰特征,包括高丰度的Gm和m7
G,但U34修饰水平较低。
培养基成分影响修饰模式
在E. coli和S. cerevisiae中,营养丰富的培养基(LB/YPD)相比基本培养基(M9/YNB)显著改变修饰谱。例如大肠杆菌在M9中queuosine(Q)水平降低,这与维生素B12
合成受限相关;酵母在YNB中mcm5
s2
U减少而mcm5
U增加,证实营养状态通过代谢通路调控tRNA修饰。
热应激诱导U34修饰重编程
在42°C(E. coli)或37°C(真核生物)热应激下,虽然整体修饰谱保持稳定,但各物种均出现1-4个特异性修饰改变。大肠杆菌mnm5
U增加1.3倍(p=0.1),伴随Um减少;酵母mcm5
s2
U降低而前体mcm5
U升高;拟南芥ncm5
U增加,线虫mcm5
U升高1.14倍(p=0.04)。这些变化集中在U34位点,暗示其功能保守性。
NAIL-MS解析分子机制
通过15
N/13
C同位素标记,发现E. coli原有tRNAs中mnm5
U增加源于修饰酶活性改变而非降解差异。新转录tRNAs中Um减少1.3倍(p=0.01),而m2
A增加1.15倍(p=0.0002)。酵母实验显示热应激降低转录速率,但新合成tRNAs中mcm5
s2
U反升高1.08倍(p=0.02),提示代谢重编程可能改变修饰酶底物比。
tRNA同受体验证特异性变化
分离E. coli的tRNALeu-UAA
、tRNALys-UUU
等发现:原有tRNAGlu-UUC
中mcm5
s2
U从23%骤降至5%,而mcm5
U相应增加。大肠杆菌修饰酶敲除株在长期热应激中表现分化:gidA(mnm5
U缺陷)在LB培养基生长延迟,但在M9中反而优于野生型,揭示环境依赖的修饰功能。
该研究首次系统比较了热应激下原核与真核生物的tRNA修饰重编程规律,揭示U34修饰作为进化保守的"分子温度计"通过双重机制发挥作用:原有tRNAs通过快速修饰调整适应急性应激,而新合成tRNAs则通过转录后修饰重编程实现长期适应。特别发现mnm5
U/mcm5
U与mcm5
s2
U的平衡变化可能通过调控U34摆动能力,优化热应激相关蛋白的翻译效率。这些发现不仅拓展了对非编码RNA表观遗传调控的认知,也为农业抗逆育种和微生物工业应用提供了潜在分子靶标。未来研究需进一步解析特定U34修饰如何精确调控应激相关mRNA的翻译,以及这种机制在气候变化背景下的生态学意义。
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