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基于抗体探针的植物病毒复制酶活细胞成像技术揭示PlAMV复制复合体动态定位
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年06月09日 来源:Plant Physiology 6.6
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本研究针对植物正链RNA病毒复制酶难以在活细胞中可视化追踪的难题,开发了基于HA标签抗体探针(FB-mCherry)与诱导表达系统的双组分标记技术。东京农业大学团队通过构建HA标记的功能性PlAMV病毒复制酶,结合内质网标记ER-GFP和dsRNA示踪系统,首次实现了活体植物细胞中病毒复制酶的精确定位,发现其在内质网和胞间连丝(PD)附近形成颗粒状复制复合体(VRC),为研究病毒复制机制提供了新工具。该成果发表于《Plant Physiology》。
植物正链RNA病毒((+)RNA病毒)的复制过程一直是植物病理学研究的热点,这些病毒通过劫持宿主细胞膜系统形成病毒复制复合体(VRC)来完成基因组扩增。然而,由于病毒复制酶分子量大(通常超过150kDa)、功能复杂,传统荧光蛋白标记往往会干扰其活性,导致活体追踪困难。目前对Potexvirus属病毒(如PlAMV和PVX)复制酶的空间动态认知,主要来自固定样本的免疫染色或非功能性截短蛋白的异位表达,无法真实反映感染过程中的酶活状态。
东京农业大学的研究团队创新性地将动物细胞开发的HA标签抗体探针(Frankenbody,FB)引入植物系统。该团队以模式病毒Plantago asiatica mosaic virus(PlAMV)为研究对象,通过基因工程在病毒复制酶C端插入单个HA标签,同时保留其复制活性。为解决探针本底信号干扰,他们设计了病毒复制依赖的双组分诱导系统:当病毒复制时表达XV转录因子,进而激活FB-mCherry的特异性表达。结合内质网标记ER-GFP和dsRNA结合蛋白B2:GFP的共定位分析,实现了多维度活细胞成像。
关键技术包括:1)构建HA标签的PlAMV复制子(PlAMV replicon-HA)和全长病毒(Li1-replicase-HA-XV);2)开发XV转录因子调控的FB-mCherry诱导表达系统;3)利用转基因本氏烟(B2:GFP株系)进行dsRNA原位示踪;4)共聚焦显微镜动态观察亚细胞定位。
【结果】
"HA frankenbody(FB) is targeted to HA-tagged endoplasmic reticulum(ER)-GFP in planta"
通过ER-GFP融合蛋白的对照实验证实,FB-mCherry能特异性识别HA标签且不影响靶蛋白定位。含3个HA标签的ER-GFP-3HA使探针信号增强3.5倍,但为保持复制酶活性,后续实验采用单HA标签策略。
"Subcellular localization of FB-mCherry expressed under the control of the 35S promoter does not change upon co-expression with an HA-tagged PlAMV replicase"
组成型表达FB-mCherry时,因探针过量导致核质弥散信号。Northern blot验证HA标签不影响病毒负链RNA合成,但传统表达系统无法有效示踪复制酶。
"Development of a two-component system that enables replication-dependent expression of FB-mCherry"
创新的XV诱导系统实现病毒复制与探针表达的耦合。免疫印迹显示仅当病毒(Li1-XV或Li1-replicase-HA-XV)存在时才能检测到FB-mCherry,且膜组分中复制酶含量相当。
"Replication-dependent expression of FB-mCherry results in fluorescent granule formation in cells infected by PlAMV encoding an HA-tagged replicase"
活细胞成像揭示HA标记复制酶形成1.0-5.0μm颗粒,沿细胞膜分布并与内质网相邻。Northern blot证实FB结合不影响病毒RNA积累。
"FB-mCherry granules formed during Li1-replicase-HA-XV infection are located in close proximity to PD and dsRNA granules"
苯胺蓝染色显示复制酶颗粒与胞间连丝(PD)共定位,B2:GFP标记证实其与病毒dsRNA复制中间体空间关联,首次直接证明功能性复制酶在PD处富集。
【结论与意义】
该研究建立了首个植物病毒复制酶的活细胞标记体系,突破性地实现了以下发现:1)功能性PlAMV复制酶通过内质网-胞间连丝途径动态分布;2)病毒复制位点(VRC)与细胞间通道存在物理偶联,暗示复制与运动协同机制;3)抗体探针技术可兼容其他表位标签(如ALFA、SNAP等),为植物微生物互作研究提供通用工具。Ken Komatsu团队开发的这项技术,不仅为解析Potexvirus属病毒的复制机制提供直接证据,其诱导表达策略更可拓展至宿主因子共定位研究,对开发新型抗病毒策略具有重要指导价值。
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