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基于冻干微球与侧流层析技术的猴痘病毒即时检测新装置开发
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年06月10日 来源:Journal of Clinical Virology Plus 1.6
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为应对猴痘病毒(MPXV)在资源匮乏地区的快速检测需求,研究人员开发了一种结合环介导等温扩增(LAMP)、冻干微球和侧流层析技术的即时诊断(POC)装置。该研究优化了F3L-1引物组(灵敏度达70拷贝/反应),验证了临床样本检测效能(1-5×LoD),并通过加速老化实验证明试剂稳定性(37°C保存63天等效室温166天),为缺乏PCR设备的地区提供了高灵敏度、可视化的解决方案。
猴痘病毒(MPXV)引发的猴痘(mpox)疫情已成为全球公共卫生挑战。尽管实时荧光定量PCR(qPCR)是临床诊断的金标准,但其依赖复杂设备、专业人员和冷链运输的特点,严重限制了在资源匮乏地区的应用。尤其在西非和中非等MPXV流行区,缺乏快速、可靠的现场检测手段导致疫情控制滞后。更棘手的是,MPXV可通过动物宿主、呼吸道飞沫甚至性接触传播,而现有抗体检测方法的灵敏度与特异性不足。这些现实困境催生了对无需复杂设备、可常温保存且能肉眼判读结果的检测技术的迫切需求。
针对这一技术瓶颈,研究人员开发了一种创新性的即时检测(POC)装置。该装置的核心技术突破体现在两方面:一是采用冻干工艺将环介导等温扩增(LAMP)试剂制成室温稳定的微球,解决了传统核酸扩增试剂的冷链依赖问题;二是通过侧流层析试纸条实现扩增产物的可视化检测,避免了对昂贵荧光检测设备的依赖。研究选用2022年全球流行的MPXV分支IIb作为靶标,通过温度梯度实验确定65°C为LAMP反应的最适温度。在引物筛选环节,比较了靶向F3L和A27L基因的4组引物,发现F3L-1引物组性能最优。为验证实际应用价值,研究还设计了包含人类核糖核酸酶P蛋白亚基POP7的内控系统,确保检测过程的质量控制。
关键技术方法包括:1) 设计靶向MPXV F3L和A27L基因的LAMP引物组;2) 开发兼容冻干微球的病毒裂解缓冲液(含2.5 M盐酸胍和0.5% Triton X-100);3) 构建三线式侧流层析试纸条(检测线1捕获DIG标记的MPXV扩增产物,检测线2捕获FAM标记的POP7内参,质控线结合链霉亲和素);4) 采用ASTM F1980标准进行37°C加速老化实验;5) 使用临床皮肤拭子样本验证检测效能。
3.1 温度与引物优化
通过时间阈值(Tp)分析确定65°C为LAMP反应最佳温度,较60-70°C范围显著缩短扩增时间。在200拷贝MPXV DNA模板下,F3L-1引物组的扩增效率显著优于F3L-2和A27L引物组。引人注目的是,组合使用A27L+F3L-1引物并未进一步缩短Tp,提示引物数量并非反应速度的决定因素。
3.2 灵敏度分析
F3L-1单引物组的检测限(LoD)为70拷贝/反应(10/10重复阳性),而A27L+F3L-1组合仅将LoD略微提升至60拷贝。值得注意的是,50拷贝浓度下所有引物组合均未检出,表明反应体系存在灵敏度阈值。
3.3 侧流层析检测
设计的试纸条成功实现双信号检测:灰色检测线1指示MPXV阳性,检测线2(FAM-POP7)验证样本质量。在70拷贝LoD浓度下,试纸条检测结果与实时荧光法完全一致,证实其可作为qPCR的可靠替代方案。
3.5 与qPCR性能对比
当检测70拷贝MPXV时,对应qPCR循环阈值(Ct)为32.7,处于临床认可的阳性范围(Ct<35)。虽然qPCR理论上可检测单拷贝核酸,但实际临床环境中LAMP的70拷贝灵敏度已能满足多数诊断需求。
3.6 临床验证
使用1-5倍LoD(70-350拷贝)的临床皮肤拭子样本测试,所有浓度均获阳性结果,且内控POP7信号稳定,证实该方法对复杂临床样本的适应性。
3.7 试剂稳定性
加速老化实验显示,冻干微球在37°C保存63天(相当于室温23°C约166天)后仍保持检测活性,仅MPXV检测线显色略有减弱,这一特性使其特别适合热带地区使用。
这项研究通过多重技术创新,成功将实验室级的MPXV检测转化为适用于资源受限场景的POC解决方案。其科学价值体现在三方面:首先,冻干微球技术突破了传统LAMP试剂的温度敏感性限制;其次,侧流层析与LAMP的结合实现了核酸扩增结果的设备无关判读;最后,内控系统的引入大幅提升了检测可靠性。相较于此前报道的RPA-CRISPR系统(如SCOPE平台)或单纯LAMP方法,该装置在操作简便性(无需DNA提取)、结果判读直观性和试剂稳定性方面具有明显优势。
研究的局限性在于目前仅验证了对MPXV分支IIb的检测效能,未来需扩展至分支I毒株的检测。此外,虽然60拷贝的LoD已接近qPCR的临床检测阈值,但通过优化酶组合或反应缓冲液成分,仍有进一步提升灵敏度的空间。从转化医学角度看,这项技术可快速适配其他病原体检测,为新发传染病的现场筛查提供技术范本。论文发表于《Journal of Clinical Virology Plus》,标志着该技术已通过同行评审的严格验证,为其后续临床应用奠定了坚实基础。
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