猪腔静脉脱细胞基质：组织学分析与体外再内皮化的血管移植研究

本研究针对血管重建中自体移植物来源受限和合成材料感染风险高的问题，通过Triton X-100/SDS联合脱细胞技术制备猪腔静脉支架，结合组织学染色、蛋白质组学分析及动态生物反应器内皮化实验，证实其保留细胞外基质(ECM)关键成分并支持人内皮细胞黏附，为临床血管移植提供新型生物材料解决方案。

　　

血管疾病治疗中，自体血管移植面临供体有限和二次损伤风险，而合成材料（如Dacron^?
）易引发感染且无法重塑。脱细胞技术通过保留天然细胞外基质(ECM)结构，成为解决这一难题的新方向。猪腔静脉因其与人类血管的相似性，成为理想研究对象。捷克查理大学团队在《Biomaterials Advances》发表研究，系统评估了脱细胞猪腔静脉的基质特性及再内皮化潜力。

研究采用4小时Triton X-100/十二烷基硫酸钠(SDS)脱细胞法处理猪下腔静脉(IVC)，通过H&E染色、Masson三色染色等组织学方法量化胶原/弹性蛋白含量，结合蛋白质组学分析基质成分。创新性设计动态生物反应器，模拟血流条件实现人内皮细胞(HUVECs)的体外黏附实验。

Vessel explant and decellularization
从25-40 kg猪获取IVC，冷冻保存后经梯度渗透法脱细胞。组织学显示脱细胞静脉(DVs)无核残留，ECM结构完整（图3B-D）。

Decellularization
近端、中段、远端比较显示脱细胞均匀性。蛋白质组学鉴定出层粘连蛋白(laminin)和纤维连接蛋白(fibronectin)等促黏附蛋白，为内皮化奠定基础。

Conclusions
该支架保留关键机械性能蛋白（胶原IV占ECM 38%，弹性蛋白21%），动态培养组内皮细胞覆盖率较静态组提高2.3倍。研究为异种血管移植提供两步策略：脱细胞支架制备+体外预内皮化，可显著降低凝血风险。

讨论指出，该猪源支架克服合成材料顺应性不匹配问题，其GAGs（糖胺聚糖）含量与天然血管无统计学差异(p>0.05)。未来需进一步验证抗钙化性能和长期通畅率，但已为肝移植血管重建等临床需求提供重要技术储备。作者团队正在开展大型动物（犬模型）在体实验，以评估免疫排斥反应。