蝙蝠源Merbecovirus EjCoV-3的ACE2/DPP4非依赖性细胞入侵机制及跨物种传播潜力研究

【字体: 时间:2025年06月18日 来源:Journal of Virology 4.0

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  本研究首次揭示日本蝙蝠源Merbecovirus EjCoV-3通过非ACE2/DPP4受体入侵细胞的分子机制,利用细菌人工染色体(BAC)反向遗传学成功拯救病毒,证实其在人呼吸道/肠道细胞及仓鼠鼻腔纤毛上皮的高效复制能力,为评估蝙蝠冠状病毒(CoV)跨物种传播风险提供了关键实验依据。

  

ABSTRACT

Betacoronavirus(β冠状病毒)在过去二十年引发三次人类疫情,其自然宿主蝙蝠持续携带潜在人畜共患病病毒。研究团队针对日本蝙蝠(Eptesicus japonensis)分离的Merbecovirus亚属EjCoV-3毒株展开系统研究,发现其刺突蛋白(S蛋白)依赖蛋白酶激活但无需经典受体ACE2或DPP4即可介导细胞入侵。通过建立基于细菌人工染色体(BAC)的反向遗传学系统,成功获得具有复制能力的重组病毒,证实其在人呼吸道细胞(RPMI2650)、肠道细胞(HRT18G/CaCo-2)及仓鼠鼻腔上皮的高效复制能力,提示存在未知受体介导的跨物种传播风险。

INTRODUCTION

冠状病毒分为α、β、γ和δ四个属,其中β属包含SARS-CoV、MERS-CoV和SARS-CoV-2等高致病性病毒。Merbecovirus亚属的代表株MERS-CoV以DPP4为受体,而近年发现的非洲蝙蝠源NeoCoV等则利用ACE2入侵。日本蝙蝠EjCoV-3的S蛋白与已知受体结合特性迥异,其基因组分析显示仅保留1个DPP4接触残基,但具有11个与HKU5-19s相似的ACE2接触位点。研究通过假病毒和真病毒系统,系统解析其入侵机制与宿主范围。

RESULTS

蛋白酶处理增强假病毒入侵

VSV/EjCoV-3假病毒实验显示,高浓度胰蛋白酶(500 μg/mL)或嗜热菌蛋白酶(100 μg/mL)处理使感染效率提升10倍以上。Western blot揭示两种蛋白酶产生差异切割模式:胰蛋白酶生成17/43 kDa片段,嗜热菌蛋白酶产生65 kDa片段。N端测序定位嗜热菌蛋白酶切割位点于S1/S2连接区上游,该区域缺乏典型弗林蛋白酶切割位点(仅含单个精氨酸残基)。

TMPRSS2与组织蛋白酶协同作用

在过表达人TMPRSS2的Vero细胞中,胰蛋白酶处理的VSV/EjCoV-3感染性显著增强,而嗜热菌蛋白酶处理组无此效应。组织蛋白酶B/L抑制剂E-64d可阻断胰蛋白酶处理组的入侵,暗示内吞体途径参与。病毒附着后添加蛋白酶使感染效率提升3倍,表明受体结合可能暴露S蛋白的蛋白酶切割位点。

非经典受体利用特征

CRISPR敲除DPP4或ACE2的Vero细胞中,VSV/EjCoV-3感染性未受影响,而对照病毒VSV/MERS-CoV和VSV/SARS-CoV则严格依赖相应受体。受体回补实验进一步验证EjCoV-3采用独立于ACE2/DPP4的未知入侵途径。

反向遗传学系统构建

将全长EjCoV-3基因组克隆至BAC载体,转染HEK293T细胞后获得P0代病毒。经嗜热菌蛋白酶激活后接种Vero/TMPRSS2细胞,配合胰蛋白酶(10 μg/mL)培养,成功获得滴度达5.4×105
PFU/mL的重组病毒。全基因组测序确认无变异,电镜观察到典型冠状病毒颗粒(直径80-120 nm)。

人类细胞感染特征

重组EjCoV-3在人鼻咽癌(RPMI2650)、结肠癌(CaCo-2)和直肠癌(HRT18G)细胞中均实现高效复制,最高滴度达107
PFU/mL。蛋白酶浓度梯度实验显示,10 μg/mL胰蛋白酶或5 μg/mL嗜热菌蛋白酶可使病毒产量提升100倍。TMPRSS2过表达使病毒在低蛋白酶条件下复制能力增强,提示宿主蛋白酶与外加蛋白酶存在协同效应。

仓鼠模型感染表现

鼻内接种EjCoV-3的叙利亚仓鼠虽无体重下降,但病毒在鼻甲中复制达104
PFU/g组织,免疫组化显示纤毛上皮细胞存在病毒抗原,伴淋巴细胞浸润。肠道组织未检测到病毒复制,与蝙蝠粪便排毒特征形成有趣对比。

DISCUSSION

本研究首次证实蝙蝠Merbecovirus可通过非ACE2/DPP4途径感染哺乳动物呼吸道。EjCoV-3的S蛋白具有独特特征:①缺乏弗林蛋白酶切割位点,依赖外源蛋白酶激活;②保守的唾液酸结合位点可能辅助宿主细胞附着;③仓鼠鼻腔特异性复制提示局部蛋白酶可能替代体外添加的蛋白酶。这些发现拓展了对冠状病毒受体多样性的认知,强调除ACE2/DPP4外,唾液酸糖缀合物等分子可能参与蝙蝠病毒跨物种传播。建立的BAC反向遗传学平台为未来Merbecovirus功能研究提供关键技术支撑。

MATERIALS AND METHODS

关键技术包括:①VSV假病毒包装系统;②CRISPR/Cas9介导的Vero细胞受体基因敲除;③SW102细菌同源重组构建BAC-EjCoV-3;④仓鼠鼻腔灌注接种模型。病毒滴定采用噬斑法(琼脂糖覆盖含2.5 μg/mL嗜热菌蛋白酶),免疫组化使用抗N蛋白单抗(5F3克隆)。统计学分析采用Holm法多重比较检验。

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