利用牛源多重免疫磁珠法与实时PCR技术检测欧亚苔原驯鹿细胞因子的创新研究

【字体: 时间:2025年06月19日 来源:Acta Veterinaria Scandinavica 1.9

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  本研究针对驯鹿(Rangifer tarandus tarandus)免疫研究工具缺乏的现状,创新性地评估了牛源MILLIPLEX?多重免疫磁珠法检测IL-6/8/10/17、TNF-α和IFN-γ的适用性,并设计特异性引物建立qPCR检测体系。结果表明该技术可有效检测驯鹿PBMCs中5种细胞因子,为研究气候变化下驯鹿疾病免疫机制提供了重要工具。

  

在北极圈广袤的苔原上,半驯化的欧亚苔原驯鹿(Rangifer tarandus tarandus)不仅是萨米文化的重要载体,更是维持极地生态系统平衡的关键物种。然而随着气候变暖、人类活动扩张和天敌威胁加剧,传统牧场正面临前所未有的碎片化危机。这种生态压力迫使牧民采取围栏饲养等干预措施,却意外导致了口疮病毒(ORFV)和鹿疱疹病毒2型(CvHV2)等疾病的暴发。更棘手的是,科学界对驯鹿免疫系统的认知仍存在巨大空白——缺乏商业化的细胞因子检测工具,使得研究人员难以解析驯鹿应对病原体感染的免疫机制。

挪威兽医研究所等机构的研究团队在《Acta Veterinaria Scandinavica》发表的研究中,开创性地将牛源MILLIPLEX? Bovine Cytokine Magnetic Bead多重免疫磁珠法应用于驯鹿研究。这项研究不仅验证了跨物种检测细胞因子的可行性,还通过设计特异性引物建立了实时荧光定量PCR(qPCR)检测体系,为驯鹿免疫学研究提供了"双保险"的技术方案。

研究团队采用多重技术路线:首先通过密度梯度离心分离驯鹿和牛的外周血单个核细胞(PBMCs),使用PMA-I(佛波酯-离子霉素)刺激后收集上清;采用牛源15重细胞因子检测试剂盒分析IL-6/8/10/17、TNF-α和IFN-γ蛋白水平;同时基于基因组数据设计特异性引物,建立qPCR检测mRNA表达谱;还分析了ORFV和CvHV2感染驯鹿的血清样本。所有实验均设置未刺激对照,并严格验证引物效率和产物特异性。

【高氨基酸同源性验证】
通过多序列比对发现驯鹿与牛的细胞因子具有高度保守性:IL-6、IL-8、IL-17和TNF-α序列完全同源,IL-10仅在第51-52位存在单氨基酸差异,IFN-γ在166位点存在苏氨酸/甲硫氨酸替换。这种分子层面的相似性为跨物种检测提供了理论基础。

【多重免疫磁珠法的验证结果】


该技术成功检测到驯鹿PBMCs中5/6种细胞因子:PMA-I刺激显著提升IL-10、IL-17、TNF-α和IFN-γ水平(P<0.001),其中IFN-γ浓度可达未刺激组的15倍。IL-8虽被检测但呈现高本底值,而IL-6始终未检出。值得注意的是,牛样本所有指标均被检出,且浓度普遍高于驯鹿,反映抗体亲和力可能存在物种差异。

【病毒感染血清分析】


CvHV2感染组在第4天出现IFN-γ爆发式增长(P<0.001),第7天仍维持高位(P=0.01),这与疱疹病毒感染的免疫特征相符。ORFV感染组则呈现个体化反应,其中一只个体(驯鹿A4)显示独特的IL-10和TNF-α波动模式,提示病毒株或宿主遗传因素可能影响免疫应答。

【qPCR检测体系的建立】


设计的引物对(除IL-6外)均实现99-107%的扩增效率,成功捕获到IL-8/10/17、TNF-α和IFN-γ的mRNA表达变化。时序分析显示细胞因子mRNA峰值多出现在刺激后6小时,而蛋白分泌高峰延迟至24小时,符合转录-翻译的生物学规律。

这项研究具有三重重要意义:首先,验证的牛源多重免疫磁珠法可作为检测驯鹿IL-10、IL-17、TNF-α和IFN-γ的应急方案,填补了极地野生动物免疫研究的技术空白;其次,建立的qPCR体系为精确定量细胞因子转录水平提供了可靠工具;最重要的是,这些方法将帮助科学家揭示气候变化压力下驯鹿的免疫适应机制,为制定科学的保护策略提供依据。研究者特别指出,未来需要扩大样本量验证IL-6和IL-8的检测方案,并建议将血清样本保存在-80°C以避免细胞因子降解。这项技术突破不仅服务于驯鹿健康监测,其跨物种检测思路也为其他野生动物的免疫研究提供了宝贵借鉴。

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