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综述:益生菌肠道定植的研究进展
【字体: 大 中 小 】 时间:2025年07月02日 来源:Journal of Future Foods CS5.8
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这篇综述系统阐述了益生菌(Probiotics)肠道定植(Colonization)的生理意义、面临的胃酸(pH 1.0-3.0)和胆盐挑战,以及微囊化(Microencapsulation)等提高存活率的技术,同时总结了体外(Caco-2/HT-29细胞模型)和体内(荧光标记、qPCR)检测方法,为益生菌功能研究提供新视角。
1908年Elie Metchnikoff首次提出益生菌概念,指摄入足够数量时可对宿主产生健康益处的活微生物。现代研究证实,其功能发挥需通过胃酸(pH 1.0-3.0)和胆盐考验并定植肠道。本文从定植意义、挑战、特性评估及提升策略展开分析。
改善肠道屏障
益生菌通过上调紧密连接蛋白(ZO-1)、粘蛋白(MUC-2/MUC-3)表达,竞争性抑制病原体(如艰难梭菌)定植,修复由抗生素或高脂饮食破坏的肠上皮屏障。例如,酵母BR14可使ZO-1表达提升50%,而植物乳杆菌Lp3通过分泌抗菌物质降低肠漏风险。
免疫调节
肠道作为最大免疫器官,益生菌能刺激分泌型IgA产生,抑制单核细胞浸润。如枯草芽孢杆菌MB40可减少李斯特菌感染猪的肝脏细菌载量达3 log10 CFU/g。
代谢调控
发酵乳杆菌MJM60397通过促进胆汁酸排泄,使小鼠低密度脂蛋白(LDL)降低38%。部分菌株(如植物乳杆菌L33)胆固醇清除率高达73.3%,其机制与胆盐水解酶(BSH)活性相关。
口服益生菌需经历唾液抗菌肽、胃酸(2小时存活率<10%)和肠液(胆盐浓度0.3%-2%)三重打击。研究显示,未包埋的双歧杆菌经模拟胃肠液处理后活菌数下降4.55 lg(CFU/mL),而海藻酸钠微囊化后仅下降1.68 lg。
生物膜形成
如枯草芽孢杆菌通过分泌胞外多糖(EPS)形成生物膜,其基因簇cpsWc可提升50%酸耐受性。
表面特性
疏水性(如植物乳杆菌AR113Δbsh疏水率达95.27%)与自聚集能力正相关,而共聚集(如乳酸菌与病原体)可增强生物膜稳定性。
体外模型
Caco-2细胞实验显示,鼠李糖乳杆菌GG在10:1接种比例下粘附率达23.83%,而瑞士乳杆菌INRA-2010-H11对口腔上皮细胞粘附率高达88.23%。
体内追踪
红色荧光蛋白(mCherry)标记技术证实,植物乳杆菌主要定植于小鼠回肠黏膜层。qPCR检测发现,低聚糖可使特定菌株定植量提升15倍。
双层包埋体系(如海藻酸钠-果胶)使益生菌胃酸存活率提升80%。新型材料如单宁酸-泊洛沙姆188可使大肠杆菌Nissle 1917结肠定植量增加25倍,而钨酸钙微凝胶能延长定植时间至1周。
当前研究尚无法明确益生菌在肠道的精确时空分布,且外源益生菌与土著菌群的互作机制仍需探索。未来需结合多组学技术(如代谢组学)和智能递送系统(如pH响应微胶囊)深化研究。
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